(三)固定
用蒸餾水洗凈材料,再用卡諾固定液(用量應為材料體積的15倍以上)室溫下固定30~60分鐘。固定的材料如暫不制片,可經90%酒精→80%酒精→70%酒精(各半小時)浸泡進行轉換,最后置于70%酒精內放入0~4℃冰箱,約可保存半年。如保存時間太長,需重新固定后再用。
(四)解離
根尖、莖尖等體細胞需經處理,除去細胞間的果膠層,并使細胞壁軟化,才便于壓片。這種處理過程稱為解離,解離時間的長短依植物材料和解離液的不同而不同。時間短細胞不易壓散,時間過長,細胞被壓破,且影響染色效果。
取材料的根尖,在生長點處切取1毫米左右(一般一個根尖可取4~5段),放入1N HCl酸解10分鐘左右,取出,用水漂洗三遍。
注:1N HCl由36%~38%濃鹽酸取83ml定容至1升配置而成。
(五)制片
選取已處理過的根尖一枚,放在干凈載玻片中央,除去非分生組織的部分,并吸去多余水分。另取一張干凈載玻片,呈十字形交叉蓋在有根尖的載玻片上,用大拇指按壓在載玻片的中央,使根尖壓成一簿層,然后將兩載玻片分開,各滴一小滴染色液進行染色,稍等片刻,取一蓋玻片,蓋玻片一邊靠在離材料不遠的載玻片上,左手握鑷子頂著蓋玻片,右手握解剖針托住蓋玻片徐徐放下,若染色液不能布滿蓋玻片時,可在蓋玻片邊緣稍加染色液,然后用一張大小合適的濾紙覆蓋在蓋玻片上,一手固定蓋玻片,另一手持鉛筆橡皮頭,對準材料輕敲,使根尖細胞分散均勻。制好的片子若不能及時進行顯微鏡觀察,可用礬士林臨時封住蓋玻片四周。
(六)觀察
制備好的細胞學片子,置于顯微鏡的載物臺上,先用低倍鏡(10×10)調焦觀察,尋找到具有分裂相的細胞后,再轉換到高倍鏡(10×40)下觀察。
七、顯微鏡使用注意事項
1.取顯微鏡時必須右手握鏡臂,左手托鏡座,嚴禁單手提鏡,勿使鏡體傾斜,防止目鏡從鏡簡中滑出或碰撞顯微鏡。
2.注意姿勢。將顯微鏡平穩地放在自己左側的適當地方,鏡臂向著自己,鏡檢者姿勢要端正。一般用左眼觀察,右眼便于繪圖或記錄。兩眼必須同時睜開,以減少疲勞。
3.將鏡臺向上調節時,須從側面觀察,以防壓碎標本玻片或損壞物鏡鏡頭。
4.一般情況下觀察標本均要加蓋蓋玻片,切忌水、灑精或其它藥品浸損鏡頭或鏡臺。觀察標本時,必須按低倍鏡——高倍鏡的順序進行。
5.顯微鏡各部要保持清潔,光學部分必須用鏡頭紙擦試,絕對禁止用其它物品擦試。其它部分可用紗布輕輕擦試。
7.觀察、繪圖時應雙眼同時張開,以便在觀察的同時繪圖。
8. 使用顯微鏡時一定嚴格按規程操作,遇到問題,如機件不靈,千萬不可用力轉動,切忌任意拆修,應立即報告指導教師。
9.使用完畢要將顯微鏡擦試干凈,恢復原狀,轉動物鏡轉換器,將4×物鏡轉到光路上,使鏡臺調至接近物鏡。
10.關閉光圈、電源,適當下降聚光鏡,將塑料罩罩好,及時收回鏡箱。
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