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  • 發布時間:2020-08-18 09:19 原文鏈接: 免疫血清制備方法(二)

    五、結果鑒定

     

    以雙相瓊脂擴散試驗測定所獲免疫血清的抗體效價,并用瓊指免疫電泳鑒定免疫血清中抗體的質量,應產生單一的沉淀弧線。鑒定方法的具體步驟參見有關部分。

     

    六、材料

     

    (一) 動物:健康成年家兔,雄性,體重2~3公斤。

     

    (二) 器材:剪刀、鑷子、注射器(2ml、50ml)附針頭(9號、6號)、稱量瓶(10ml)、量筒、動物固定架、滅菌三角燒瓶(200ml)、手術器械一套、血管夾、黑絲線、塑料放血管等。

     

    (三) 試劑

     

    1.滅菌生理鹽水;

     

    2.純化人IgG(10mg/ml);

     

    3.消毒酒精及碘酒;

     

    4.羊毛脂;

     

    5.石蠟油;

     

    6.活卡價苗(BCG)(75mg/ml);

     

    7.弗氏不完全佐劑(FIA)制備:稱羊毛脂10克,逐滴加入優質石蠟油40ml,邊滴邊研磨,分裝于疫苗瓶中(每瓶10ml),高壓滅菌(8磅20分鐘)后保存備用。

     

    8.弗氏完全佐劑乳化抗原(FCA-IgG)的制備:將FIA予溫(60℃30分鐘),吸取3ml于研缽中,逐滴加入活BCG(75mg/ml)0.5ml及純化人IgG2.5ml(2.4mg/ml)牨_滴入邊研磨直至形成均一性的乳狀液,取1滴滴于冷水面上不散開為合格。

     

    七、注意事項

     

    1.免疫用實驗動物的抗體反應性個體差異性較大,因此免疫時至少應選用兩只以上動物。另外,不能使用妊娠動物。

     

    2.免疫用的抗原必須經FCA或FIA充分乳化后才能注射,否則將明顯影響抗原的免疫效果。上述制備乳化抗原的方法較費時、費力。采用H-81微型振蕩混合器法或三腔管研磨法制備。前者是將抗原液與佐劑按比例混合后,置于混合器上使之劇烈振蕩(頻率2900轉/分,振幅6mm);后者是將免疫用的佐劑和抗原液按比例混合后,吸入注射器內再將注射器連接于三腔管上反復抽吸研磨。這兩種方法約1小時即可使抗原充分乳化。

     

    3.佐劑一方面可提高特異性免疫反應的效果獲得高效價的免疫血清,但若抗原不純時,可使抗原中極微量的污染物(0.005mgN)產生抗體,以致導致免疫血清的純度受到影響。另外,有些實驗動物種系對BCG過敏,尤其是豚鼠其次是家兔,當再次注射完全佐劑時,可以引起變態反應而導致免疫失敗。為此,第二次免疫注射時應減少佐劑中BCG的含量或改用不完全佐劑,以減少和防止變態反應的發生。

     

    4.抗原的劑量決定于抗原的種類。對免疫原性強的抗原劑量應相別較少,免疫原性弱的抗原劑量可相對較多。抗原的用量一般以體重計算。在使用佐劑的情況下,一次注入的總劑量以0.5mg/kg體重為宜。如不加佐劑時劑量可加大10倍。另外,免疫周期長者可少量多次注射,免疫周期短者可較大量少次注射。

     

    5.免疫方法上也可采用多點注射法免疫動物。即于家兔脊柱兩旁選4-6點皮下注射,同時于兩側肩部(或臂部)和鼠蹊部各注一處。每點注0.2ml,間隔2周后再于上述部位選不同點同上注射,也可產生高效價的免疫血清。


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