實驗方法原理 培養細胞有來源易得、細胞分裂率高和制出標本清晰度高等優點，是制備染色體極好的對象。
實驗材料 細胞
試劑、試劑盒 HanksNaHCO3培養基血清秋水仙素
儀器、耗材 酒精燈鑷子培養瓶吸管離心管
實驗步驟
1. 培養細胞
取處于指數生長期、用較大瓶皿培養的、80 %～90 %匯合單層培養細胞；
2. 加秋水仙素
使用最終濃度為0.02～0.8 μg/ml營養液；溫箱繼續培養6～10 小時；
或用低溫封閉法：把培養細胞置于4 ℃條件下6～12 小時后，再于37 ℃溫箱中繼續培養6～10 小時處理（加秋水仙素）；
3. 采集分裂細胞
可利用分裂中期細胞體變圓與底物附著不牢特點，此時手持培養瓶，左右反復橫向水平搖動，令培養液在培養細胞表面反復沖涮；應用此法可使90 %的中期分裂細胞從瓶壁脫落；注意勿用力過猛，以防多量非分裂細胞脫落影響觀察；
4. 離心
收集培養液，1000 轉/分鐘，離心5～10 分鐘；
5. 低滲處理
吸除上清液、加入預溫至37 ℃的0.075 M KCl溶液，在溫箱中靜置20～30 分鐘；
6. 預固定
向懸液中加新鮮1：3醋酸、甲醇固定液1 ml，用吸管吹打調勻；此措施能起到先使細胞表面輕微固定，可防止固定后細胞粘連成塊；
7. 固定
離心，同4，吸除上清液，加新鮮固定劑5～10 ml；加固定劑時要用一手微斜持離心管，另手用吸管吸取固定劑，把固定劑逐滴滴在離心管壁上，使之慢慢流入離心管中，然后輕輕吹打均勻，置15～20 分鐘；
8. 重復7，末次離心后，小心吸除大部上清，據懸液中細胞密度大小，余下固定液0.5～1 ml；
9. 制片
用滴片法制片，按如下步驟：徹底洗凈載物片，勿留任何油脂，置冰箱中儲存備用。滴片前現從冰箱中取出冷載物片1 張，在載物片表面出現細微水氣時，立即向片的一側滴2～3 滴細胞懸液（如固定液不散，可能因載物片未洗凈或不冷所致），滴片時的距離能保持半米高度才好。滴片后置室溫中令其自然干燥，或用吹風機熱風吹干亦可。如此制備好的標本可置盒中備用（做顯帶或熒光觀察等）或立即進行染色觀察；
10. 染色和封片
一般常用Giemsa染色；取干液Giemsa1 份加pH6.8磷酸緩沖液9 份混合，染色10 分鐘后，水洗、晾干、可直接觀察（適用油浸鏡）；如標本需要保存或做長時間觀察，可過二甲苯兩次后，用中性樹膠封片（或先迅速過丙酮兩次，每次30 秒）后，再過二甲苯，然后封片亦可。
其他
一、討論
1. 染色體制備過程是既易又難的方法；易在要求條件簡單、操作不復雜繁鎖，易于獲得結果。
2. 難在制備出的標本不總是非常理想和一致，常出現分裂相數少、染色體分散不良、或染色體過短等，為此在初做時，應試做預試驗，摸清諸條件，能提高成功率。
