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  • 發布時間:2019-04-11 18:18 原文鏈接: 姐妹染色單體分化染色實驗

    實驗方法原理細胞被培養在含有 5-溴脫氧尿苷(5-Bromodeoxyuridine:BUdR)的培養基中,當細胞在DNA 合成時,BUdR 能作為核苷酸的前體取代胸腺嘧啶核苷(Thymidine:TdR)被摻入到新合成的DNA中。

    在第一個細胞周期時,由于半保留復制的機制,中期染色體的
    每條染色單體DNA雙鏈都被摻入了BUdR(TB·TB)。

    但在第二個周期時,在化學組成
    上便發生了差別:中期染色單體的兩條染色單體中只有一條單體保留了半數無BUdR的舊鏈,而另一條單體的雙鏈都含有BUdR(TB·BB),當用二苯并咪唑衍生物熒光染料Hoechst 33258染色時,TB鏈能發出較強熒光,BB鏈對熒光有淬滅作用發弱光。

    由于
    Hoechst 33258熒光染色消失速度很快,繼而人們建立了觀察SCD的永久標本法。

    其中
    常用有熱磷酸鹽處理加Giemsa染色和熒光染料加Giemsa染色(FPG)。

    TB鏈與Giemsa
    染料親和力強,與BB鏈親和力差,得到結果和用熒光染料染色相一致的、形成深淺不同的差別染色。


    實驗材料

    細胞標本

    試劑、試劑盒

    BUdRNaOH秋水仙素NaH2PO4GiemsaSorensenSSC

    實驗步驟

    一、BUdR 貯存液的制備

    BUdR 5 mg(先用0.5 ml 1 N NaOH 溶解),然后補加蒸餾水至5 ml,即成1000 μg/ml的貯存液,因BUdR遇光會發生分解,貯存液應避光冰凍保存。


    二、BUdR 摻入和制片程序
     

    1.  BUdR 培養液制備

    先制備好含BUdR的培養液(最終濃度為3~10 μg/m);


    2.  BUdR 摻入

    如用傳代細胞,在末次傳代后,改換用含BUdR的培養液培養;
    如為人末梢血細胞,一開始就用含BUdR培養液培養(培養瓶放在特制黑色木盒、黑布中或用黑紙包裹)37 ℃溫箱內培養;


    3.  中止摻入與制片

    待細胞經歷兩個細胞周期(人周圍血細胞培養48或72 小時);


    4.  加秋水仙素→制片(與其它染色體制備法相同)。


    三、姐妹染色單體分化染色


    1.  方法一


    (1)老化

    中期染色體標本老化1~2 天;

     

    (2)預處理

    放入預熱至85~89 ℃的1 M NaH2PO4溶液中(用NaOH調pH至8.0)
    處理15 分鐘;
     

    (3)制片

    然后用溫蒸溜水輕輕漂洗、蒸餾水沖洗、晾干、Giemsa液染色10 分
    鐘、晾干、二甲苯透明、封固。


    2.  方法二(FPG 法)


    (1)標本

    摻入BUdR后的中期染色體標本;

     

    (2)熒光染色

    用熒光染料Hoechst 33258(用pH7.0 Sorensen緩沖液配制,濃度
    為0.5 μg/ml)染色12~15 分鐘;


    (3)黑光燈照射

    自來水沖洗、加1 滴pH 8.0 Sorensen緩沖液,覆以蓋片,用黑
    光燈照射(20w),距離5 厘米,時間半小時;


    (4)溫浴

    50~60 ℃熱的2×SSC 液溫育2 小時,蒸餾水沖洗、晾干;

     

    (5)染色

    pH 6.8 的2 %Giemsa染色15 分鐘、透明封固。


    3.  方法三


    (1)標本

    摻入BUdR后的中期染色體標本,置30 瓦日光燈下,燈距3 厘米,照
    射6 小時;


    (2)溫浴

    用2×SSC 液(60 ℃)處理15 分鐘;

     

    (3)Giemsa染色10 分鐘,也可獲得滿意的標本。


    此外還有其它一些分化染色法,但較復雜,不常使用。上述分化染色法中以方法二效果較好。

    展開 
    注意事項

    1.  BUdR是一種強突變劑,使用濃度不宜太高,否則會產生細胞毒性;濃度達每ml·30 μg 時,SCE數目能明顯升高;

    2.  方法一中,標本溫育時間與老化時間
    的長短有關,老化時間越長,溫育時間也要延長。

    其他

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