1.3 定量方法 在real-time Q-PCR中，模板定量有兩種策略；相對定量和絕對定量。相對定量指的是在一定樣本中靶序列相對于另一參照樣本的量的變化。絕對定量指的是用已知的標準曲線來推算未知的樣本的量。
1.3.1 標準曲線的法的相對定量
由于在此方法中量的表達是相對于某個參照物的量而言的，因此相對定量的標準曲線就比較容易制備，對于所用的標準品只要知道其相對稀釋度即可。在整個實驗中
樣本的靶序列的量來自于標準曲線，最終必須除以參照物的量，即參照物是1*的樣本，其它的樣本為參照物量的n倍。在實驗中為了標準化加入反應體系的RNA
或DNA的量，往往在反應中同時擴增一內源控制物，如在基因表達研究中，內源控制物常為一些管家基因（如beta-actin,3-磷酸甘油醛脫氫酶
GAPDH等）。
1.3.2 比較CT法的相對定量
比較CT法與標準曲線法的相對定量的不同之處于在于其運用了數學公式來計算相對量，前提是假設每個循環增加一倍的產物數量，在PCR反應的指數期得到CT
值來反應起始模板的量，一個循環（CT=1）的不同相當于起始模板數2倍的差異。但是此方法是以靶基因和內源控制物的擴增效率基本一致為前提的，效率的偏
移將影響實際拷貝數的估計。
1.3.3 標準曲線法的絕對定量 此方法與標準曲線法的相對定量的不同之處在于其標準品的量是預先可知的。質粒DNA和體外轉入的RNA常作為絕對定量標準品的制備之用。標準品的量可根據260nm的吸光度值并用DNA或RNA的分子量來轉換成其拷貝數來確定。
2 實時熒光定量PCR技術的應用
Ｒeal-time
Q-PCR的應用范圍很廣泛，包括mRNA表達的研究、DNA拷貝數的檢測、單核苷酸多態性（SNPs）的測定等。以下就目前real-time
Q-PCR在易位基因的檢測，細胞因子的表達分析，腫瘤耐藥基因表達的研究以及病毒感染的定量監測中的應用作一概述。
2.1
微小殘留病變的檢測 腫瘤疾病尤其是血液的惡性腫瘤常伴有特異性基因的易位，這種易位往往可以作為監測臨床治療效果的一種腫瘤標志。雖然在過去的幾十年里
治療方案的改進已大大地延長了病人的生存期，但是緩解期的病人仍存在復發的危險性。因此微小殘留病變（MRD）的檢測對于進一步調整治療方案是至關重要
的。Real-time
Q-PCR的應用正成為檢測腫瘤微小殘留分子標志的一種必備的研究工具。通過對腫瘤融合基因的定量測定能指導臨床對病人實行個體化的治療。急性粒細胞性白
血病（AML）最常見的染色體異常是交互易位t(8；21) (q
22；q22)，在這易位中，AML-1轉錄因子基因和8號染色體的MTG8基因發生融合，致使正常的AML-1轉錄調控受到影響，這可能是白血病的病
因。目前的研究證明用real-time
Q-PCR來檢測融合基因有助于對這些病人的MRD進行定量，其作為預后的指標或對治療方案的評估是有價值的。同樣的方法也被用于定量其它的易位融合基因
水平，如慢性粒細胞性白血病（CML）的BCR-ABL融合基因；急性淋巴細胞性白血病（ALL）的白血病特異的TEL-AML1融合基因；濾泡狀淋巴瘤
（FL）的染色體易位t(14;18)(q32;q21)和bcl-2重排等。許多研究都在很大程度上受益于real-time
Q-PCR方法的應用，隨著技術的發展，Real-time Q-PCR的運用將不斷地擴大。
2.2 細胞因子的表達分析
細胞因子是調節蛋白，它通過調節免疫反應（包括淋巴細胞活化、增殖、分化、生存和凋亡）在免疫系統中起著核心作用。許多不同類型的細胞都能分泌這種低分子
量的蛋白質，其中包括淋巴細胞、抗原遞呈細胞、單核細胞、內皮細胞和成纖維細胞。細胞因子可被分為不同的組；白介素（IL-1～IL-23），干擾素
（IFN-α，IFN-γ等），集落刺激因子（CSF），腫瘤壞死因子（TNF），腫瘤生長因子（TGF-β等）和化學因子（MCP-1，MIP-1
等）。為了闡明在許多炎癥反應，自身免疫性疾病和器官移植排異中的免疫致病途徑，細胞因子mRNA表達譜的可靠定量是很重要的。盡管被檢樣本中細胞因子含
量往往極低，然而real-time反轉靈PCR（RT-PCR）以其高敏感性和準確性在細胞因子的定量中越來越受到青睞。
2.3 腫瘤耐藥基因表達的研究
對化療藥物的耐藥是治療腫瘤病人的主要障礙。由于耐藥限制了許多腫瘤的成功治療，因此研究腫瘤細胞對耐藥機制就變得十分重要。目前研究中發現主要的耐藥機
制有：ATP結合盒基因超家族（ATP-binding cassette
superfamily）的膜轉運蛋白介導的耐藥，這些蛋白包括：MDR-1基因編碼的P-糖蛋白（P-gp），多藥耐藥相關蛋白（MRP），肺耐藥相關
蛋白（LRP），乳腺癌耐藥蛋白（BCRP）等；酶介導的耐藥，包括拓撲導構酶（Topo），谷胱甘肽（GSH）及谷胱甘肽-S-轉移酶（GST），蛋白
激酶C（PKC），脫氧胞嘧啶核苷激酶（deoxycytidine
kinase）等，凋亡基因介導的耐藥，如bcl-2家族，p53基因，c-myc等。多藥耐藥（MDR）是多因素，多種機制共同作用的結果。real-
time反轉錄PCR（RT-PCR）是了解腫瘤耐藥，指導臨床治療策略的有用手段，它能觀測用藥前后及復發時腫瘤細胞的耐藥基因mRNA表達變化，從而
及時調整治療方案和評價疾病的預后。
2.4 病毒感染的定量監測
擴增技術的發展使得對病毒的定性或定量檢測的能力隨之提高，也使研究病毒的負荷和疾病進展的關系成為可能。Real-time
Q-PCR是主要被運用于科研和診斷領域的擴增技術，它不僅能對病毒定性，而且由于其實驗的批間和批內差異小，重復性好，因此能方便、快速、靈敏、準確地
定量病毒DNA或RNA的序列，更重要的是從中可以動態地研究在整個病程中潛在病毒的復活或持續，從而使臨床醫生和病毒學家能檢測臨床的變化，如抗病毒治
療的效果，耐藥變異的出現等。目前運用較多的是在器官移值中對使用免疫抑制劑的病人用Real-time
Q-PCR來定量測定CMV感染。研究表明在骨髓移植的病人中用Real-time
Q-PCR檢測CMV感染比傳統的pp65抗原試驗更敏感，抗CMV藥物治療能使血中的病毒含量下降，Real-time
Q-PCR對于快速定量骨移植病人的CMV感染和監測CMV復活是一個有用的工具。
3 存在的問題及應用前景
在real-time
Q-PCR技術中，無論是相對定量還是標準曲線定量方法仍存在一些PCR定量方法均有的問題有待解決。在標準曲線定量中，標準品的制備是一個必不可少的過
程。目前由于無一統一標準，各個實驗室所用的生成標準曲線的樣品各不相同，致使實驗結果缺乏可比性。此外，用real-time
Q-PCR來研究mRNA時，受到不同RNA樣本存在不同的逆轉錄（RT）效率的限制。在相對定量中，其前提是假設內源控制物不受實驗條件的影響的，合理
地選擇合適的不受實驗條件影響的內源控制物也是實驗結果可靠與否的關鍵。另外，與傳統的PCR技術相比，Real-time
Q-PCR的不足之處是：（1）由于運用了封閉的檢測，減少了擴增后電泳的檢測步驟，因此也就不能監測擴增產物的大小；（2）因為熒光素種類以及檢測光源
的局限性，從而相對地限制了real-time Q-PCR的復合式（multiplex）檢測的應用能力；（3）目前real-time
Q-PCR實驗成本比較高，從而也限制了其廣泛的應用。
隨著技術不斷改進和發展。目前real-time Q-PCR已成為科研的主要工具，該技術未來的應用前景是令人鼓舞的，一方面real-time
Q-PCR技術與其它分子生物學技術相結合使定量極微量的基因表達或DNA拷貝數成為可能。另一方面熒光標記核酸化學技術和寡核苷酸探針雜交技術的發展以
及real-time Q-PCR技術的應用，使定量PCR技術有一個足夠的基礎為廣大臨床診斷實驗室所接受，將有助于臨床醫生對疾病的診斷和治療。
4 結 語
Real-time
Q-PCR的發展使得研究人員又多了一種比較簡單且自動化的手段去研究許多重要的基礎課題。雖然此技術仍存在一些不足需要改進，但是它為real-
time Q-PCR在常規診斷檢測中的運用打下了良好的基礎。Real-time Q-PCR將成為未來分子生物學實驗室必備的研究工具。