1.
蛋白的保存很大程度上依賴于蛋白本身的結構穩定性，其次和保存條件優化有關；
2.
盡量避免蛋白的反復凍融，這會對蛋白的結構和活性造成破壞；
像你說到的第二天就要用，根本沒必要放在-70℃低溫，一般來講，盡量安排好實驗周期，在3天內用完蛋白（4℃保存）是理想條件；
3.
如果不得不保存，要分裝，留下馬上就用的放在4℃，其他放低溫，每次取1只；如果有凍干機，凍成干粉再放到-70比液態低溫更好，再溶解也會好很多（但很多蛋白還是會有失活問題）；
4.
關于保護劑，如果蛋白穩定性不強，一般會加甘油（5%-50%濃度）和疊氮鈉（抑菌），這樣一來，取出時，不得不做透析或脫鹽，以去除甘油和疊氮鈉，會帶來損失，相比而言，凍干粉就好很多；
5.
關于咪唑的去除問題，如果確信咪唑的存在對你后續的實驗沒影響，可以不去；但實際上，很多實驗都會受到咪唑的影響，或者說一旦實驗有疑問，你就無法判定是否是因為咪唑，所以建議你去咪唑，去咪唑的方式包括：透析、濃縮管離心、脫鹽柱。個人認為，去除效率、最省時、蛋白回收率最高的辦法是脫鹽柱。