注意事項
1、嚴格掌握適應證，年老、體衰患者檢查中應以心電圖及經皮檢測血氧飽和度進行監護。術中給予鼻導管吸氧或高頻通氣供氧。
2、術中嚴格無菌操作，防止繼發感染。
3、按要求正規操作，合格的灌洗液應達到規定的回收量，不混有血液（紅細胞數<10%），不應混有多量上皮細胞（<3%）。
4、獲得灌洗液后盡早送檢。
5、檢查后出現發熱、出血、肺部感染、支氣管痙攣等并發癥時，作相應處理。
檢查過程
檢查操作
1、術前3-4h禁食。術前30min肌注地西泮（安定）10mg及阿托品0.5mg。
2、2%利多卡因鼻腔、氣道局部粘膜麻醉。
3、纖維支氣管鏡經鼻腔插入氣管，嵌入右肺中葉或左肺舌葉段支氣管管口（局限性肺病變應選相應支氣管肺泡段），注入2%利多卡因2-3ml局麻后，用50ml注射器將37℃生理鹽水分次注入，每次25-50ml總量100-300ml，注入后立即通過負壓吸引裝置吸引、回收至硅質灌洗液收集瓶內。一般回收液量應達注入液量的40%-60%。
4、回收液用雙層無菌紗布過濾，除去粘液，記錄總回收液量，裝入硅質容器中，置于冰水（-4℃）中送檢驗室，應在2-3h內對灌洗液進行檢查、分析。
支氣管肺泡灌洗術細胞學檢查方法
（1）BALF細胞總數和分類計數檢測
①將上述回收灌洗液裝入塑料離心管內以1200r/min，在4℃下離心10min，上清（原液或10倍濃縮）-70℃儲存，用做可溶性成分的檢測。
②經離心沉淀的細胞成分用Hank液（不含Ca2+、Mg2+）在同樣條件離心沖洗2次，每次5min。棄去上清后加Hank液3～5ml制成細胞懸液。也可以用灌洗液原液減少細胞丟失。
③然后在改良的Neubauer計數臺上計數BALF中細胞總數，一般以1×106/ml表示。如果細胞數過高時，再用Hank液稀釋，調整細胞數為5×106/ml，并同時將試管浸入碎冰塊中備用。
④細胞分類計數，采用細胞離心涂片裝置，加入備用細胞懸液（細胞濃度為5×106個/ml）100μl，在4℃下以1200r/min離心10min，通過離心作用將一定數量的BALF細胞直接平鋪于鹽載玻片上。取下載玻片立即用冷風吹干，置于無水乙醇中固定30min后進行染色，一般用Wright或HE染色。
⑤在40倍光學顯微鏡下計數200個細胞，進行細胞分類計數。
（2）BALF中T淋巴細胞亞群的檢測
①采用間接免疫熒光法，將上述獲得的BALF細胞成分，用10%小牛血清RPMI 1640培養液3～5ml制成細胞懸液。
②將細胞懸液倒入平皿中，置于5% CO2 37℃培養箱中孵育2h，進行貼壁處理，去除肺泡巨噬細胞。
③取出細胞懸液，再用Hank液沖洗離心1次，棄上清留20～100μl。經貼壁處理后的細胞懸液中，肺泡巨噬細胞顯著減少，淋巴細胞相對增多。
④將經貼壁處理的細胞懸液分裝3個小錐形離心管內，每管20～30μl，用微量加樣器向標本中加單克隆抗體CD3、CD4和CD8各20～40μl，混勻置于4℃冰箱中作用1～2h。
⑤取出標本，先用Hank液沖洗離心2次，以12000r/min離心20s，然后加羊抗鼠熒光抗體各20～40μl，置于冰箱作用30min。
⑥取現標本用Hank液以同樣速度和時間離心沖洗2次，棄上清留20μl充分混勻細胞，取1滴于載玻片上加蓋玻片。熒光顯微鏡下數200個淋巴細胞并計算出標有熒光的細胞陽性率。