也稱為G顯帶，是最常用的顯帶方法，具有操作簡便、經濟及標本能長期保存等優點。
1、Giemsa原液的配制：
（1）稱3.75gGiemsa粉置研磨器中，加少許丙三醇研磨，研磨越細越好；
（2）將研細的Giemsa加丙三醇移入500ml棕色瓶內，丙三醇的總量為250ml，用一定量甲醇洗干凈研磨器。
（3）搖勻，置60℃水浴鍋24小時或37℃溫箱72小時，經常搖動。
（4）取出冷卻后，加甲醇總量至250ml混勻，密封棕色瓶備用。貯藏時間越長，染色效果越好。
2、實驗材料：
中期染色體標本；
0.9%氯化鈉注射水；
3%tris液體；
0.25%胰蛋白酶；
Gremsa染色液；
蒸餾水；
水浴鍋；
立式染缸；
定時器或時針；
溫度計；
鑷子及紗布；
刻字筆；
3、操作程序：
（1）消化液配制：取0.9%氯化鈉注射水100ml，加0.25%胰蛋白酶1ml，制成0.025%胰蛋白酶鹽水消化液，加4-5滴tris液調PH6.8左右，移消化液于立式染色缸并置37℃水浴鍋中備用；
（2）染液配制：取立式染缸，加蒸餾水500ml，加3滴tris液調PH并加入Giemea染液1ml左右，用吸管調勻備用；
（3）漂洗液：取立式染缸一個，內加蒸餾水備用；
（4）試消化：待消化液溫度在37℃左右時，取同批標本較多者標本1張，分二節或三節進行消化，每節相差十五秒左右，從45秒或60秒開始增減。取出后先在紗布或吸水紙上直立除去帶出胰蛋白酶，后置蒸餾水染缸內漂洗，取出后，標本斜面朝上，刮去染色缸內染液上浮膜，沿槽插入，每分鐘移動1次，染色3-5分鐘。
（5）洗片：從染色缸中取出標本玻片，自來水沖洗，取刻編號面朝上用紗布干凈玻片背部染色，稍干，高倍鏡下觀片，確定分帶與染色時間。
（6）分帶：取4張待分帶標本玻片，細胞面朝左側按順序插入37℃的消化液中，消化時間較試消化選擇時間延長5-10秒鐘，取出每片間隔時間約10秒鐘左右。
（7）消化及染色調整：每次消化完一批標本后，需加入配好的消化液25ml于消化缸中，下次消化時間不變。同樣，每次染色一批標本后加Giemsa染色液2-3滴，調勻，每次染色時間不變；
（8）Giemsa染色調整：若Giemsa染色標本偏紅，說明染色液偏酸，可加tris數滴調藍，若Gremsa染色標本偏藍則說明tris加多了；
（9）保存：將分好帶的及觀察中的標本及時收集于玻片盒內保存，防止細胞涂面灰塵污染及擦損。
注意：Giemsa消化染色過程中，有兩個重要的環節，一是胰酶消化環節，消化不足帶不出現，消化過度染色體變得膨脹和不著色，必須把握好胰酶濃度、消化時間和消化溫度；二是預處理或老化環節，對消化和帶型清晰度有很大影響，其中80℃2小時熱處理，是簡便易行和效果較好的辦法。