在上幾期的文章中，我們分別介紹了熒光成像與生物發光成像的比較、熒光蛋白、熒光染料的挑選方法。當大家選擇了合適的標記方法并建立成像模型（藥物注射、腫瘤注射等）后，需要對實驗動物進行活體成像觀察。在成像前，對實驗動物進行完全脫毛是非常重要的步驟，直接關系能否獲得高質量的成像數據。今天將為大家詳細介紹成像前動物脫毛處理的方法與注意事項。
脫毛的必要性
1、毛發會阻擋、吸收和散射光線。特別是黑色毛發比其他顏色的毛發會吸收更多的光，即使是白色毛發也會吸收光線，導致很難檢測到熒光信號。近紅外波段（NIR
spectrum）的染料在組織中有最小的散射和吸收，但依然會被毛發顯著的吸收和散射
[1-2]。研究表明，毛發的存在使皮下注射部位的熒光強度降低了50%
[3]。因此在使用活體成像系統檢測前，有必要將實驗動物進行完全脫毛以減少對成像信號的干擾。
2、毛發會產生強烈的自發熒光。動物組織特別是毛發和皮膚中存在內源性分子如彈性蛋白（elastin）、膠原蛋白（collagen）、色氨酸（tryptophan）、NADH、卟啉類化合物（porphyrins）、黃素類（flavins）在波長＜600
nm的激發光下會產生強烈的自發熒光[4]。這些自發熒光物質非特異性地被激發光源激發，導致在成像時產生很強的背景信號，將毛發完全脫掉可以有效降低背景信號。
脫毛的材料準備
可以說，對實驗動物完全脫毛是活體成像實驗的必要步驟之一。首先我們需要準備以下材料備用：
| 物品 | 作用 |
| 理發推剪 | 將大部分毛發進行去除 |
| 脫毛膏 | 去除剩下的絨毛以完全脫毛 |
| 棉簽 | 用于涂抹和去除脫毛膏 |
| 溫水 | 用于清洗脫毛膏與絨毛 |
| 紙巾或棉球 | 用于清洗脫毛膏和擦拭酒精 |
| 75%酒精 | 用于皮膚消毒、消除脫毛膏的味道防止動物啃咬 |
| 抗生素軟膏（備選） | 用于脫毛過程中偶爾的皮膚損傷消炎 |
備注：脫毛膏可選進口品牌如Nair depilatory cream 、國產品牌如貞采源脫毛膏等均可。抗生素軟膏可選進口的Taro Pharmaceuticals三聯抗生素、國產品牌如紅霉素軟膏均可。
脫毛的步驟
在準備好材料后，按照以下步驟對實驗動物進行完全的脫毛：
1、動物麻醉，將實驗動物使用麻醉機進行完全麻醉（可鏈接到RWD麻醉機的文章）。
2、理發推剪脫毛，將完全麻醉的動物使用理發推剪對感興趣的成像區域進行脫毛，剔除大部分毛發。
3、用棉簽蘸取脫毛膏覆蓋在脫毛區域，均勻涂抹后輕輕按摩數秒，等待30秒-1 分鐘。
4、用紙巾或棉球用溫水沾濕，將脫毛膏順著毛發的生長方向進行清洗，完全去除絨毛。若此時仍有少量毛發殘留，可重新蘸取少量脫毛膏涂抹在毛發上，等待30秒后再清洗脫毛膏。
5、用紙巾或棉球蘸取75%消毒酒精，對脫毛區域進行再次清潔，消除脫毛膏的味道。
6、若皮膚有受傷的部位，涂抹上抗生素軟膏，將動物放置在加熱墊上等待蘇醒。
其他注意事項
脫毛膏已被證明是有效的、無創傷、無毒的，但是使用時依然需要注意時間，過長的涂抹時間會導致皮膚損傷。用75%消毒酒精完全清洗脫毛膏的味道可以防止動物對脫毛部位的啃咬。
皮膚損傷會到導致成像時出現強烈的背景熒光，理發推剪要小心操作，盡量防止大面積的皮膚損傷。
C57BL/6小鼠脫毛后會擾亂正常的毛發生長周期，引起皮膚色素沉著，即皮膚變黑，導致成像信號被極大的衰減（可達到90%）[3]，因此脫毛步驟選擇在成像前1~2天進行最佳。此外，如果前期已經對C57BL/6小鼠進行脫毛操作，則在成像前需要觀察皮膚色素的沉著情況。
4、可以用剃須刀片代替脫毛膏進行完全脫毛，但是需要練習和小心使用，否則容易割傷實驗動物和實驗人員。
毛發對成像質量的影響
如圖所示，C57BL/6小鼠通過尾靜脈注射ICG染料后使用理發推剪進行脫毛（未使用脫毛膏）。黃色框為剃毛較為干凈的區域，藍色框為殘留有絨毛的區域，成像結果清楚顯示：1、脫毛更加干凈的區域信號更強（平均熒光強度5060）；2、殘留絨毛的區域熒光信號由于被大量吸收，信號更低（平均熒光強度1050.82）；3、頸部未脫毛區域，基本無無熒光信號（平均熒光強度27.99）。
以上簡單的例子即可表明毛發對成像質量的影響！以對腹腔中各臟器進行活體成像為例，標準的脫毛應該如下所示：完全去除絨毛并且脫毛范圍需要稍大且不損傷小鼠皮膚。
在對實驗動物處理后，就要選擇合適的成像設備進行成像。在這里，給大家推薦一款由CELLGENTEK公司研發的活體成像利器：FOBI整體熒光成像系統！內置4種熒光通道和高清真彩色CCD，可對各種常用場景進行高質量成像。
參考文獻
1、Temporal Variations of Skin Pigmentation in C57Bl/6 Mice Affect Optical Bioluminescence Quantitation. Allison Curtis et.al. Mol Imaging Biol 13:1114Y1123.2011.
2、Simple generation of hairless mice for in vivo imaging. Yoshikazu Hoshino.Exp. Anim. 66(4), 437–445, 2017.
3、Optical Imaging on the IVIS SpectrumCT System: General and Technical Considerations for 2D and 3D Imaging. Jen-Chieh Tseng. et.al.
4、Hair Removal on Rodents. Johns Hopkins University Animal Care and Use Committee.