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  • 發布時間:2020-04-23 23:08 原文鏈接: 豬源性成分核酸檢測試劑盒(一管式PCR熒光探針法)...

    說明

    物種鑒定系列可針對食品、飼料等樣品中動物源性成分的特異核酸片段進行擴增,通過實時擴增曲線判定結果。本產品用于豬源性成分的檢測,檢出限為0.1%

    ◆ 產品組成(48測試)

    021012MⅡ


    試劑

    含量

    A-豬源-P

    20μL × 8管× 6排

    NG-P

     100μL × 2支

    PG-豬源-P

     100μL × 1支

    適用儀器

    ABI 7500、CFX 96、Mx 3005P、LineGene9600等實時熒光PCR儀。

    ◆ 自備耗材和儀器

    ①冰盒;②移液器(0.5-10μL,10-100μL,100-1000μL)及配套滅菌吸頭;③離心機;④渦旋混勻器;⑤金屬浴。

    ◆ 注意事項

    1.本試劑檢測靈敏度高。為了防止污染,實驗要分區操作。

    1)第一區:樣本制備區。

    2)第二區:模板添加區。

    3)第三區:擴增及產物分析區。

    分區之間最好進行物理性隔離,避免人為因素造成的污染。

    2.實驗過程中穿戴工作服和乳膠手套,不同區域獨立使用工具,需更換手套和實驗服。

    3.嚴格按照操作步驟操作,試劑配制和加樣等步驟請嚴格按照說明書要求在冰盒上操作。

    4.反應液中的成分對光敏感,應避光保存。試劑使用前要完全解凍,但應避免反復凍融,推薦使用前離心30秒,并按檢測頻次將反應液以適當體積分管保存。

    5.反應結束后,擴增管請置于密封袋內丟棄,當日清理,開蓋易造成氣溶膠污染,禁止開蓋。

    6.不同批號試劑請勿混合使用,在有效期內使用。

    ◆ 樣品處理

    參照《SN/T 3730.8-2013 食品及飼料中常見畜類品種的鑒定方法 第8部分:豬成分檢測 實時熒光PCR法》或其他標準處理樣品,制備的樣本保存待用。

    樣品的采集和制備是動物源性鑒別的重要步驟,為防止交叉污染,應使用一次性消耗品,研缽應經160℃干烤2 h,其他不宜干烤或高壓處理的器皿應使用1%次氯酸鈉溶液浸泡。

    取樣應盡量采取肌肉組織,對于同一批樣品,應多點采集合并后,作為一份樣品進行均質,提取DNA。

    采樣過程應快速完成,將采取的樣品迅速放入組織攪碎機中進行均質成糜狀,充分混勻,取0.1 g充分混勻的樣品,采用液氮研磨或均質器均質。

    詳細步驟請按照標準操作或查閱食安通軟件。

    ◆ 實驗操作

    1.模板制備(樣本制備區)

    建議使用試劑配套動物基因組DNA提取系列產品,具體過程詳見產品說明書。

    2.添加模板(模板添加區,放置于冰盒上進行)

    剪下所需測試數的已含有反應液的PCR管,放置在室溫待解凍后,離心30秒后揭開封口膜,向每管反應液中分別加入5μL模板,順序為NG、待測樣品模板、PG-豬源-P。蓋好配套的PCR管蓋后,渦旋混勻30s,離心1min,立即進行PCR擴增反應。

    3.擴增反應(擴增及產物分析區)

    使用熒光定量PCR儀,熒光基團選擇FAM,淬滅基團選擇TAMRA。

    按下列條件設置擴增反應:

    PCR循環

    熒光收集位點



      95℃  

    10分鐘

    1個循環

      95℃   

    15秒

    40個循環

      60℃   

    1分鐘


    4.基線和閾值設定

    基線調整取3-15個循環的熒光信號,閾值線應超過陰性對照擴增曲線的最高點

    結果判定

    檢測樣品無Ct值,曲線為直線或輕微斜線,無“S”型擴增曲線,可報告樣品陰性,不含有豬源性成分或含量低于檢出限;

    檢測樣品Ct≤35,曲線呈“S”型擴增曲線,可直接報告樣品陽性,含有豬源性成分;

    檢測樣品Ct>35,可直接報告樣品陰性,不含有豬源性成分或含量低于檢測限。

    • NG反應為平滑直線,PG反應為“S”型擴增曲線,此次檢測結果有效,否則無效。


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