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  • 發布時間:2019-09-12 10:01 原文鏈接: 用噬菌粒載體制備單鏈DNA

               

    實驗方法原理 噬菌粒巧妙地組合了質粒和絲狀噬菌體的特征。除了基本特征外,這些質粒通常是高拷貝數的,并帶有一個修飾后的絲狀噬菌體的主要基因間區。這個區域 ( 野生型為 508 bp)不表達蛋白,但含有全部的順式作用序列,該作用是病毒 DNA 合成起始和結束及噬菌體顆粒的形態發生必不可少的。
    實驗材料

    大腸桿菌 F' 菌株 大腸桿菌 DH11S

    試劑、試劑盒

    卡那霉素 SDS 溶液 蔗糖凝膠加樣緩沖液

    儀器、耗材

    瓊脂糖凝膠 M9 基本培養基平板 YT 瓊脂平板 水浴

    實驗步驟

    一、材料

    1. 緩沖液和溶液

    卡那霉素(10 mg/ml)

    SDS 溶液(2%,m/V)

    蔗糖凝膠加樣緩沖液

    2. 凝膠

    瓊脂糖凝膠(0.7%) 懸于 0.5 X TBE, 含 0.5 μg/ml 溴化乙錠

    3. 培養基

    加富的 M9 基本培養基平板

    含 60 μg/ml 氨芐青霉素的 YT 瓊脂平板

    2 X YT 培養基

    含 60 μg/ml 氨芐青霉素的 2 X YT 培養基

    含 25 μg/ml 卡那霉素的 2 X YT 培養基

    4. 專用設備

    水浴,調至 65℃

    5. 載體和菌株

    噬菌體 M13K07 ( 輔助)

    大腸桿菌 F' 菌株

    大腸桿菌 DH11S

    大腸桿菌 DH11S,用 M13 噬菌體的噬菌粒載體轉化

    大腸桿菌 DH11S,用帶有外源 DNA 的 M13 噬菌體的重組噬菌粒載體轉化

    二、方法

    高滴度輔助噬菌體原種的制備

    成功使用噬菌粒的關鍵是制備已知精確滴度的輔助噬菌體原種。

    1. 從加富的基本瓊脂平板上挑取一個大腸桿菌 DH11S 的新鮮單菌落,接種 20 ml 2 X YT 培養基,溫和揺動,37℃ 培養至 OD600 達 0.8。

    2. 用 2 X YT 培養基制備一系列 10 倍稀釋的 M13K07 噬菌體,將稀釋的噬菌體鋪板,以獲得在 DH11S 細胞層中良好分離的噬菌斑。

    3. 挑取分離良好的單個噬菌斑接種于裝有 2~3 ml 含 25 μg/ml 卡那霉素的 2 X YT 培養基的 15 ml 培養管中。溫和搖動(250 r/min), 37℃ 培養 12~16 h。

    重要:以下步驟使用從單個新鮮挑取的噬菌斑獲得的 M13K07 原種。

    4. 將感染上清轉移至 1.5 ml 無菌微量離心管,在微量離心機上,以最大轉速,4℃ 離心 2 min。上清轉移至新管中 4℃ 保存。

    5. 采用在一株支持 M13 噬菌體生長的大腸桿菌 F' 菌株(TGI、DH11S、NM522 或 XLl-Bkie) 中形成噬菌斑的方法,測定每個噬菌體原種的滴度。

    原種的感染噬菌體顆粒滴度應為 1010 pfu/ml。棄去所有低滴度的原種。

    用輔助噬菌體增殖重組噬菌粒

    6. 在兩塊含有 60 μg/ml 氨芐青霉素的 YT 瓊脂平板上,取重組噬菌粒轉化的和空噬菌粒轉化的 DH11S 菌劃線,37℃ 培養 16 h。

    7. 挑取數個重組噬菌粒轉化克隆和 1~2 個其親本載體轉化的克隆,接種至裝有 2~3 ml 含 60 μg/ml 氨芐青霉素的 2 X YT 培養基的 15 ml 培養管中。

    由于影響單鏈 DNA 得率的因素難以確定,應從每個噬菌粒重組體中挑取多個克隆,難以提高成功率。

    8. 在每個培養管中加入 M13K07 輔助噬菌體至濃度為 2 X 107 pfu/ml。劇烈振蕩 ( 300 r/min) 37℃ 培養 1.0~1.5 h。

    在這種短時間培養后,細菌培養液應只是略渾,如果生長過旺,用預熱的 2 X YT 培養基稀釋培養物,直至渾濁恰能看見。




    9. 在培養物中加入卡那霉素至終濃度為 25 μg/ml,37℃ 14~18 h。

    由于噬菌體 M13K07 含有一個卡那霉素抗性基因,因而在這一步加入抗生素后,只有那些被感染了的細菌才能存活。

    其他輔助噬菌體(如 R408 ) 不帶抗生素抗性標記。在加入抗生素前應檢査輔助噬菌體的基因型。

    10. 將菌懸液轉移至微量離心管,在微量離心機上,以最大轉速,室溫離心 5 min, 分離菌體和培養基,將上清轉移至新管中 4℃ 保存。

    用凝膠電泳估計噬菌粒單鏈 DNA 的得率

    11. 在 0.5 ml 微量離心管中分別加入 40 μl 上清與 2 μl 2% SDS, 輕拍管壁混合內容物,65℃ 溫育 5 min。

    估計含噬菌粒單鏈拷貝的病毒顆粒的得率。先將上清稀釋后感染大腸桿菌 DH11S,然后鋪于含氨芐青霉素(60 μg/ml)的 YT 瓊脂平板。根據 37℃ 培養 24 h 后產生的氨芐青霉素抗性克隆數,計算上清中含噬菌粒單鏈 DNA 的病毒顆粒數,含 2 X 1011~ 5 X 1011 pfu/ml 的上清可以獲得滿意的純化噬菌粒單鏈 DNA 得率。

    12. 在每個噬菌粒 DNA 樣品中加入 5 μl 加樣緩沖液,混合后加至 0.7% 瓊脂糖凝膠的加樣孔。

    13. 6 V/cm 電泳數小時,至溴酚藍遷移至膠的大約一半。在紫外線下檢査和照相。

    得率隨噬菌粒上外源 DNA 的大小和持性的不同而不同。但通常為約 1 μg/ml 培養物。

    14. 從含大置單鏈 DNA 的上清中分離噬菌粒單鏈 DNA。按方案“M13 噬菌體單鏈 DNA 的制備”的步驟進行,將體積放大 2~3 倍。

    噬菌粒和 M13 噬菌體載體一樣,隨外源 DNA 的大小和特性不同,其單鏈 DNA 的得率可以差五至十倍。 通常片段越大,得率越低。而且,即使外源 DNA 大小相同,其單鏈 DNA 的得率也可以有很大變化,如,大多數酵母 DNA 片段對噬菌粒的增殖,似乎沒有問題,然而同樣大小的人基因組 DNA 可能使單鏈 DNA 的得率令人失望。噬菌粒上外源 DNA 的插入方向和噬菌體 DNA 復制起點的方向也會對得率產生重要影響。因此,用相反方向重新克隆片段或換用噬菌體 DNA 復制起點方向相反的載體有時可以解決得率低的問題。

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