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  • 發布時間:2020-08-11 10:12 原文鏈接: 用PCR控制基因組DNA文庫的質量實驗

    試劑、試劑盒 ddH20Vent 緩沖液Vent DNA 聚合酶 dNTP質粒 DNAPCR 引物
    儀器、耗材 瓊脂糖凝膠電泳所需的試劑和設備熱循環儀
    實驗步驟 
    一、材料

    1. 緩沖液、溶液和試劑

    ddH20

    2. 酶和酶緩沖液

    10X Vent 緩沖液

    Vent DNA 聚合酶

    3. 核酸和寡核苷酸

    dNTP,各 20 mmol/L

    PCR 引物,可以與基因組 DNA 文庫克隆位點兩側的載體序列退火

    質粒 DNA(見下面第 1 步)

    4. 特殊設備

    瓊脂糖凝膠電泳所需的試劑和設備,包括溴化乙錠 (見第 5 步)

    熱循環儀

    二、方法

    1. 在細菌中擴增后,用基因組文庫制備的質粒 DNA 建立下列反應。

    10~50ng 的質粒 DNA

    50pmol 的各引物

    5ul 的 10XVent 緩沖液

    dATP、dCTP、dTTP 和 dGTP, 各 0.5ul

    1U 的 Vent DNA 聚合酶

    用 ddH20 定容至 50ul

    對下面的每種質粒載體應該分別進行反應:

    表達載體,沒有文庫 DNA 插入

    基因組 DNA 文庫的混合物

    少量 DNA, 由基因組 DNA 文庫的單個細菌克隆制備

    2. 在一個熱循環儀中,94°C 將混合物預熱 20s。

    3. 按下面的參數進行 30 輪 PCR 循環。

    94°C15s

    55°C10s(或用引物的合適退火溫度)

    72°C40s

    將最后一次循環的延伸時間延長至 60s。

    4. 冷卻至 4C。

    5. 取 25ul 的各反應產物,跑 4% 的瓊脂糖凝膠電泳,并用溴化乙錠染色分析(Sambrook and Russell 2001)

    三、分析

    在圖 26-6 所示的例子中,對文庫混合物進行 PCR 分析,其中用的引物是 PmlⅠ位點的側翼序列,結果顯示,文庫中含有目的大小的插入片段,但有大量的原始載體的污染 [圖 26-6(a), 第 2 泳道]。從文庫中選擇單個克隆進行 PCR 分析,驗證了用文庫混合物做模板的結果,顯示文庫中的原始載體大約占 40%[所分析的 24 個克隆中有 10 個,圖 26-6(a), 第 3~26 泳道]。為了提高文庫的質量,用 PmlⅠ酶消化文庫,然后在細菌中重新進行擴增,以減少原始載體的污染。對文庫混合物進行 PCR 分析顯示,用 PmlⅠ消化后,無插入的環狀載體的污染大大減少了 [圖 26-6(b), 第 2 泳道和第 3 泳道]。用 PmlⅠ消化又重新在細菌中擴增后,在文庫中隨機選擇單個克隆進行 PCR 分析,證實無插入 DNA 的出現頻率比原始文庫大大降低 [20 個克隆中有 0 個,小于 5%,圖 26-6(b), 第 4~23 泳道],并且克隆中含有預計大小的插入片段。對基因組片段文庫中的克隆進行 DNA 序列分析顯示,文庫中含有預計大小的人類基因組 DNA 片段(數據沒有列出)。因此,PCR 提供了一個快速、敏感和方便的方法,來分析原始的和改善過的文庫。


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