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  • 發布時間:2020-04-28 00:03 原文鏈接: 細胞培養的注意事項(二)

    13.如何選擇正確的血清種類?

    14.可否使用與原先培養條件不同的血清種類?

    不能。血清是細胞培養上一個極為重要的營養來源,所以血清的種類和品質對于細胞的生長會產生極大的影響。來自不同物種的血清,在一些物質或分子的量或內容物上都有所不同,血清使用錯誤常會造成細胞無法存活。

    15.血清滅活是否必須?

    這個問題現在有爭議。有人主張價格不菲的血清中含有諸如生長因子,維生素,氨基酸等珍貴物質,而將它們置于50℃以上的溫度長達30分鐘的熱處理會對血清中的生長因子,氨基酸等成分帶來的負面影響。盡管如此,在大多數實驗室之中血清的熱滅活還是作為常規來執行,尤其是在昆蟲細胞和胚胎干細胞培養中。

    16.培養基中是否添加抗生素?

    除特殊篩選系統中外,一般正常培養狀態下,培養基中不應添加任何抗生素。

    17.何時更換培養基?

    視細胞生長密度而定,或遵照細胞株基本數據上的更換時間,按時更換培養基即可。

    四、細胞傳代

    18.細胞傳代的方法都有哪些?

    根據不同的細胞采取不同的方法。貼壁生長的細胞用消化法傳代;部分貼壁生長的細胞用直接吹打即可傳代;懸浮生長的細胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代,或用自然沉降法吸除上清后,再吹打。

    19.原代培養的首次傳代應注意的問題?

    細胞沒有生長到足以覆蓋瓶底壁的大部分表面以前,不要急于傳代;原代培養時細胞多為混雜生長,不同的細胞有不同的消化時間,因此要根據需要注意觀察及時處理,并根據不同細胞對胰蛋白酶的耐受時間而分離和純化所需要的細胞;

    吹打細胞時動作要輕巧盡可能減少對細胞的損傷;首次傳代時細胞接種數量要多一些,使細胞能盡快適應新環境而利于細胞生存和增值;隨消化分離而脫落的組織塊也可一并傳入新的培養瓶。

    20.使用胰蛋白酶時加入EDTA的目的?應如何處理?

    EDTA作用較胰蛋白酶緩和,主要作用在于能從組織生存環境中吸取Ca2+、Mg2+,這些離子是維持組織完整的重要因素。但EDTA單獨使用不能使細胞完全分散,因而常與胰蛋白酶按不同比例混合使用,效果較好。常用比例為1:1或者2份EDTA:1份胰蛋白酶。EDTA的工作液濃度為0.02%,用不含Ca2+、Mg2+的BSS配置。如果使用EDTA,在終止消化前,需用緩沖液將消化液清除后才能加培養液。第一次開瓶后應立即少量分裝于無菌試管中,保存于 –20 ℃,避免反復冷凍解凍造成胰蛋白酶的活性降低,并可減少污染的機會。

    21.欲將一般動物細胞離心下來,其離心速率應為多少轉速?

    欲回收動物細胞,其離心速率一般為800~1000 rpm,5~10 分鐘,過高的轉速,將造成細胞死亡。

    22.細胞的接種密度為何?

    依照細胞株基本數據上的接種密度或稀釋分盤的比例接種即可。細胞數太少或稀釋的太多亦是造成細胞無法生長的重要原因之一。

    23.細胞交叉污染的可能原因?

    多種細胞系進行維持傳代操作時,各細胞系所需的器材和溶液沒有嚴格分開,往往會使一種細胞被另一種細胞污染。

    五、細胞凍存

    24.冷凍培養基為什么要加DMSO?

    因為細胞在不加任何保護劑的情況下直接凍存時,細胞內外的水分都會很快形成冰晶,冰晶的形成將造成細胞損傷,還可引起細胞的的死亡。目前多采用甘油和DMSO做保護劑。這兩種細胞無明顯毒性,分子量小,溶解度大,易穿透細胞,可以使冰點下降,提高包膜對水的通透性。

    25.DMSO 的等級和無菌過濾的方式為何?

    冷凍保存使用的 DMSO 等級,必須為 Tissue culture grade 的 DMSO,其本身即為無菌狀況,第一次開瓶后應立即少量分裝于無菌試管中,保存于 4 ℃,避免反復冷凍解凍造成 DMSO 的裂解而釋出有害物質,并可減少污染的機會。若要過濾 DMSO,則須使用耐 DMSO 的 Nylon 材質濾膜。

    26.欲冷凍保存時,細胞冷凍管內應有多少細胞濃度?

    冷凍管內細胞數目一般為 1x106 cells/ml vial,融合瘤細胞則以 5x106 cells/ml vial 為宜。

    27.冷凍保存細胞的方法?

    冷凍保存方法一:冷凍管置于 4 ℃ 30~60 分鐘 →-20 ℃ 30 分鐘 → -80 ℃ 16~18 小時(或隔夜) → 液氮槽 vapor phase 長期儲存。

    冷凍保存方法二: 冷凍管置于已設定程序的可程序降溫機中每分鐘降 1~3 ℃ 至 –80 ℃ 以下, 再放入液氮槽 vapor phase 長期儲存。–20 ℃ 不可超過 1 小時,以防止冰晶過大,造成細胞大量死亡,亦可跳過此步驟直接放入 –80 ℃ 冰箱中,存活率稍微降低一些。

    28.細胞凍存太多會不會浪費?

    每一種細胞系都應有充足的凍存儲備,防止由于細胞污染等因素造成的細胞系的絕種,而且每一批次培養的細胞狀態都不同,應該挑選幾個狀態較好的批次凍存保種。另外二倍體細胞等有限細胞系如果暫時不用最好凍存以免傳代太多,造成細胞衰老或者發生改變。

    29.如何識別和預防常見的細胞污染?

    之前ESCO生命科學發過題為《細胞污染過程中常見的微生物污染和預防》一文,詳細介紹了細胞是何種生物性污染的判別方法及預防細胞污染的詳細方案,如果感興趣的話可以點擊閱讀原文展開了解,或者關注ESCO生命科學的微信公眾號:Esco_China,進一步了解更多關于細胞培養的相關內容。


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