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  • 發布時間:2020-06-16 17:31 原文鏈接: 細胞技術專題:大鼠肝星狀細胞培養實驗

    實驗方法
    實驗方法原理選用Wistar大鼠經消化酶灌注肝臟后,用分離液分離HSC,通過觀察其自發熒光及其顯著特征性結構的脂肪染色、細胞免疫化學染色等方法鑒定。
    實驗材料

    雄性 SD 大鼠

    試劑、試劑盒

    戊巴比妥鈉 小牛血清 DMEM 酶消化液I、Ⅱ Nycodenz D-Hanks’液 HBSS 臺盼蘭

    儀器、耗材

    手術器械 尼龍網 相差顯微鏡 熒光顯微鏡

    實驗步驟

    一、實驗步驟
     

    1. 大鼠腹腔麻醉后在超凈臺上剖腹,進行門靜脈插管。

     

    2. 以D-Hanks’液灌注,同時剪開下腔靜脈,沖掉血液后,改灌以100 ml 酶消化液I(0.05% IV 型膠原酶)。

     

    3. 待肝臟變軟后,離體肝臟并剪碎,繼續以酶消化液II(含20U/ml DNase I 的0.05% IV 型膠原酶)消化15 min,尼龍網過濾后以450 g 離心5 min(4℃,下同)。

     

    4. 以HBSS 重懸沉淀至10 ml,再混以20 ml Nycodenz 液,分置于離心管中,并分別覆以2-3 ml HBSS,1450 g 離心16 min 后取界面細胞。

     

    5. 以HBSS重懸后再次離心收集細胞,以DMEM重懸后進行細胞計數,并判斷存活率和產量,最后按照常規方法接種(10細胞/cm),次日換液,以后每2-3 天換液一次。

     

    6. 傳代方法:棄去培液后以D-Hanks’液洗兩次,加0.125%胰酶(原代最好加0.05% EDTA)消化,鏡下觀察細胞突起回縮(2-5 min左右),以完全培液(DMEM+10% NBS)終止反應(若不用EDTA,可以不需離心), 充分吹打后以 1:2-1:3 接種,然后繼續培養(5% CO2,37℃)。


    二、結果

    接種次日,光鏡下可見細胞呈星芒狀,胞質內有脂滴,熒光鏡下328  nm 處見自發熒光。附照片(圖 1)。

     

    圖 1. 原代培養第 2 天的大鼠肝星狀細胞

    收起 
    其他

    一、討論

    進一步鑒別需要做免疫組化:Desmin 和α-SMA;后者在細胞激活后才表達。也采用過無須原位消化的方案,完全可行,只不過消化時間更難控制!實驗采用原代培養的或傳代后9代內的細胞(最好5 代以內)。

    二、文獻

    1. 袁桃霞,張錦生,張月娥,等. 大鼠肝 Ito 細胞的體外培養及肝素對其抑制作用的觀察. 上海醫科大學 學報,1996,23(2):90-93.


    2. Huang GC, Zhang JS, Tang QQ. Involvement of C/EBP-α gene in in vitro activation of rat hepatic stellate cells. Biochem Biophys Res Commun,2004,324(4):1309-1318.


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