1. 按照 14.4 實驗中步驟 1~7 制備瓊脂凝膠底層。
2. 用等體積 2× 培養基(即
Ham’SF12、RPMI1640、DMEM 或 CMRL1066。用 10×培養基配2×
培養基,取半量所需終液量,加兩倍濃度的血清)稀釋美希索(1.6 %美希索,4 Pa-S(4000cps),以 UPW 溶解,置于冰上)至 0.8
% ,充分混勻,冰上保存。
3. 胰蛋白酶消化單層貼壁細胞,收集懸浮細胞或骨髓細胞,計數。
4. 制備以下稀釋濃度的細胞,細胞的最高濃度為 1×105 /ml 。
(a)1×105 /ml
(b)將 1×105 /ml 稀釋 3 倍成 3.3×104 /ml
(c)將 3.3×104 /ml 稀釋 3 倍成 1.1×104 /ml
(d)將 1.1×104 /ml 稀釋 3 倍成 3.7×103 /ml
美希索有黏性,用不帶針頭的注射器更容易操作。
5. 將四種稀釋度分別標在 4 個小玻璃瓶或試管上,從每種稀釋液中吸出 40 μl,包括 1×105
/ml 稀釋液,分別放人相應容器內,再向每個容器中加 4 ml 0.8 %
美希索培養基,用漩渦混旋器充分混勻,如果細胞特別脆弱,用注射器(用于分裝美希索。由于黏稠,美希索會附著于吸管內壁,造成分裝量不準確)上下輕柔地抽吸溶液幾次,然后用注射器再從每個容器中吸出
3 個 1 ml 分別加在相應的三個培養皿上。最終濃度如下:

(a) 1×105 /ml/皿
(b) 330 /ml/皿
(c) 110 /ml/皿
(d) 37 /ml/皿
6. 將培養皿放置在加濕的溫箱屮培養至集落形成。由于集落會在瓊脂與美希索的界面形成,所以培養 1 周后添加新鮮培養基 1ml/皿或孔,2 周后在不影響集落的情況下,棄舊液,更換更多新鮮培養基。
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