實驗方法原理 |
NK細胞存在于人或動物外周血、脾臟、淋巴結和骨髓中,能殺傷某些腫瘤細胞、病毒感染靶細胞,無需抗原或有絲分裂原刺激,亦不依賴抗體或補體,在機體殺傷腫瘤、防御感染及免疫調節中發揮重要作用。 |
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實驗材料 | K562 LiBr |
試劑、試劑盒 | 3H-TdR 51Cr FCS RPMI1640 rHu IL-2 |
儀器、耗材 | 培養瓶 培養板 CO2孵箱 液閃儀 計數儀 |
實驗步驟 |
一、效應細胞的制備
(2)取1×106細胞(0.5 ml),加Na251CrO4 100 μci,37 ℃孵育2~3 h,每15 min輕輕振搖一次
(3)用10 %FCS RPMI1640洗滌3 次,每次800 rpm,5 min
(4)重懸細胞濃度1×105 /ml
(5)96 孔V型或U型培養板中,每孔加100 μl(1×104細胞),每份3 個復孔 (6)每孔加入100 μl不同細胞濃度的效應細胞,最大釋放組加入100 μl,1 %TritonX-100;自然釋放組加100 μl完全培養基
(7)200 g 離心1 min,37 ℃、CO2孵箱 4 h,200 g 離心1 min
(8)每孔取出100 μl上清,γ計數儀上測定cpm值
實驗組cpm-自然釋放cpm
特異性殺傷率(%)=─────────────
最大釋放cpm-自然釋放cpm
(2)37 ℃孵育2~3 h
(3)用10 %FCS RPMI1640洗滌3 次,每次800 rpm,5 min 調整細胞濃度為1×105 /ml
(4)96 孔U型或平底培養板中,每孔加100 μl(1×104細胞),每份3個復孔
(5)每孔加入100 μl不同細胞濃度的效應細胞,最大釋放組加100 μl 1%TritonX-100,自然釋放組加100 μl完全培養基
(6)CO2孵箱培養18~24 h
(7)每孔吸出100 μl上清,加入胰蛋白酶(終濃度0.15 %)和DNA酶(終濃度為0.0125 %)
(8)繼續孵育30 min
(9)用細胞收集儀收獲于玻璃纖維紙上
(10)干燥后,移入液閃瓶中,加入1 ml閃爍液,β液閃儀中測cpm值
實驗組cpm
特異性釋放率(%)=(1- ────── )×100%
對照組cpm
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注意事項 |
1. 每次試驗最好取3~4 個不同效應細胞/靶細胞比例,常用效靶比例為100∶1,50∶1,25∶1,12.5∶1。 (1)1個溶解單位(Lytic unit,LU)為一定效應細胞30 %溶解(殺傷)5×103靶細胞(K562)的水平。
(5)3周以內或超過3個月以上小鼠的NK水平一般很低。
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