一、材料準備 1. 小鼠腹腔巨噬細胞懸液的制備
(1)將BALB/c小鼠眼球放血處死,用750 mL/L 乙醇消毒小鼠皮膚后。
(2)腹腔注射5 mL RPMI1640基礎培養基。
(3)輕揉小鼠腹部5 min,從側腹壁小心抽吸出液體,收集細胞到15 mL 的離心管中,于4℃以1500 r/min,離心5 min,棄上清,用RPMI1640基礎培養基重懸,并將細胞密度調整為2×109個細胞/L,接種到96/24孔細胞培養板中,于37℃、50 mL/L CO2培養箱培養。
(4)3 h 后棄上層培養液,用冷的RPMI1640基礎培養基輕輕洗滌2次,去除未貼壁細胞即得已貼壁的巨噬細胞。 二、實驗步驟
1. 對照實驗
(1)實驗設置空白對照組(加DMEM完全培養液)、對照組(加巨噬細胞懸液)、Sal80 μmol/L 組、Sal160 μmol/L 組和Sal320 μmol/L 組,每組設3個復孔。
(2)將取密度為2×109個細胞/L的腹腔巨噬細胞接種于96孔板中,每孔添加190 μL的RPMI1640基礎培養基,并加入10 μL的Sal工作液,使其終濃度分別為80 μmol/L、160 μmol/L 及320 μmol/L,于37℃、50 mL/L CO2培養箱中培養48 h。
(3)每孔加入20 μL (質量濃度為5mg/L)MTT,避光孵育4 h 后,離心(1500 r/min,5 min)棄上清,每孔加100 μL 二甲基亞砜(DMSO),于振蕩器上避光振蕩10 min 以溶解孔底紫色結晶,在酶標儀于490 nm 波長檢測各孔吸光度值,并計算細胞的相對存活率。
(4)細胞相對存活率=[(不同濃度的Sal組的A值-空白對照組的A值)/(對照組的A值-空白對照組的A值)]×100%。
2. 采用MTT比色法檢測
(1)實驗設對照組、LPS+IFN-γ組和Sal+LPS+IFN-γ組,每組設3個復孔。
(2)將密度為2×109個細胞/L的腹腔巨噬細胞接種到96孔板中,每孔添加190 μL的RPMI1640基礎培養基,并加入10 μL不同濃度的Sal(終濃度為80、160、320 μmol/L)培養4 h。
(3)加入LPS9(終濃度為10 mg/L)和IFN-γ(終濃度為80 μg/L),于37℃、50 mL/L CO2培養箱中培養48 h。
(4)每孔加入20 μL的MTT(終濃度為5mg/L),繼續培養4 h后離心(1500 r/min,5 min)。
(5)棄上清,每孔加入100 μL DMSO,震蕩10 min,酶標儀于波長490 nm檢測A值,并計算Sal對巨噬細胞的增殖促進率。
(6)促進率=[(Sal+LPS+IFN-γ組的A值—LPS+IFN-γ組的A值)/LPS+IFN-γ組的A值]×100%。
3. 采用SytoxGreen染色法檢測
(1)實驗設對照組、CHX和Sal+CHX組,每組設3個復孔。
(2)將密度為2×109個細胞/L的腹腔巨噬細胞接種到96孔板中,添加190 μL RPMI1640基礎培養基,將10 μL終濃度為160 μmol/L的Sal工作液加入到貼壁的巨噬細胞中。
(3)培養4 h 后,在CHX組加入終濃度為0.5 μmol/L 的CHX,繼續于37℃、50 mL/L CO2孵箱中培養48 h。
(4)加入終濃度為0.5 μmol/L的Sytox??Green對96孔板中的巨噬細胞室溫下染色15 min,用熒光酶標儀檢測巨噬細胞Sytox Green染色的熒光強度。
4. 采用免疫熒光微球法檢測
(1)實驗設對照組、LPS+IFN-γ組、不同濃度的Sal組和Sal+LPS+IFN-γ組,每組設3個復孔。
(2)將密度為2×109個細胞/L的腹腔巨噬細胞接種到24孔培養板中,每孔加500 μL RPMI1640基礎培養基,并加入10 μL 不同濃度的Sal(終濃度為80、160、320 μmol/L)。
(3)37℃、50 mL/L CO2培養箱4 h。
(4)加入終濃度為10 mg/L的LPS和終濃度為80 μg/L的IFN-γ,于37℃、50 mL/L CO2培養箱中孵育24 h,最后加入直徑為1 μm 的熒光微球(終濃度為1×1010/L),繼續培養2 h。
(5)輕輕吸掉上清,用PBS輕輕洗滌清除未吞噬的微球,然后用胰酶將貼壁的腹腔巨噬細胞消下來。
(6)收集細胞,離心(1500 r/min,5 min),用200 μL PBS重懸后立即用FCM進行檢測。
5. 采用H2DCFDA染色法檢測
(1)實驗設對照組、LPS+IFN-γ組和Sal+LPS+IFN-γ組,每組設3個復孔。
(2)按照密度為2×109個細胞/L的腹腔巨噬細胞接種到96孔培養板中,每孔加入190 μL 的RPMI1640基礎培養基,并加入10 μL 不同濃度的Sal(終濃度為80、160、320 μmol/L)。
(3)37℃、50 mL/L CO2培養箱4 h。
(4)加入終濃度為10 mg/L 的LPS和終濃度為80 μg/L的IFN-γ,于37℃、50 mL/L CO2培養箱中孵育24h。
(5)棄上清,用終濃度為5 μmol/L 的H2DCFDA染液,每孔加100 μL 染液避光室溫染色30 min。
(6)用熒光酶標儀進行檢測,其發射光波長為485 nm,檢測光波長為520 nm。
6. 采用Griess試劑盒法檢測
(1)實驗設對照組、LPS+IFN-γ組和Sal+LPS+IFN-γ組,將密度為2×109個細胞/L的腹腔巨噬細胞接種到24孔培養板中。
(2)每孔加500 μL RPMI1640基礎培養基,并加入10 μL不同濃度的Sal(終濃度為80、160、320 μmol/L)。
(3)37℃、50 mL/L CO2培養箱培養4 h。
(4)加入終濃度為10 mg/L 的LPS和終濃度為80 g/L 的IFN-γ。
(5)37℃、50 mL/L CO2培養箱中孵育24 h,吸取50 μL 上清于96細胞培養板中,按Griess試劑盒說明書進行檢測,用酶標儀于波長540 nm 檢測A值。
(6)同時按Griess試劑盒說明書繪制標準曲線并計算得出各組產生的NO量。
7. 統計學分析:結果用x±s表示,n為樣本量。統計作圖軟件用MicrosoftExcel。組向比較采用One-wayt檢驗,P<0.05為具有統計學意義。 展開 |