蛋白質合成實驗

實驗步驟

材料

無菌

細胞培養，如 1X10⁴～ 1X10⁶ 個細胞，24 孔板
³H-亮氨酸。無血淸培養基中 2 MBq /ml (～50uCi/ml) (特異活性并不重要，因為它將由培養基中的亮氨酸濃度決定）

非無菌

SLS 或 SDS，1% (35m mol/L ) 溶于 0 .3 mol/L NaOH
三氯醋酸（TCA)
液閃瓶
Eppendorf 管
閃爍液，最小含水為 10%

操作步驟

1. 細胞生長至所需密度。

2. 從孵箱中取出培養板，加人預溫的溶于培養液或 BSS 中的放射性同位素，稀釋度為 1:10 (如 l00ul/ml/孔）。

3. 盡快地將細胞放回孵箱。

4 . 繼續培養 4～24 h。

提示： 不同的蛋白質更新率不盡相同。本操作程序并不針對任何特定的一種蛋白質，而可用于快速生長細胞中的總蛋白。當第一次用來測定一個細胞系的蛋白質合成時，要核實合成率在所選的孵育時間內是否呈線性。如果氨基酸池比飽和時低，可發生延遲。

5 . 從孵箱中取出培養物，小心從孔中吸去培養液至適當的廢棄放射性液體容器中（見 7.7.2 節）。
1. 用冷 HBSS 或 D-PBSA 輕輕地清洗細胞。

提示 某些單層培養，特別是一些松散貼附的連續細胞系，諸如 HeLa-S , 可能在清洗時便離散開來。如遇這種情況，移去同位素，并加入甲醇，將單層固定，靜止 lO min，小心地移走甲醇，令其晾干。

7．將培養板置于冰上，加人 0.6mol/L TCA ，于 4°C 靜置 lO min ，：然后吸去所有未摻入的前體物。

8. 重復第七步 2 次，但每次只許 5 min 。

9 . 以 MeOH 清洗培養物，晾干培養板。

10．加人 0.5 ml 0.3mol/L NaOH ，內含 1% SLS，室溫下靜置 30 min 。

11. 混合每孔中的培養物，將它們移人液閃瓶中。

12. 加入 5m l 閃爍液，在閃爍儀中計數。

提示： 生物降解性閃爍劑（如 Ecoscint)，比以甲苯或二甲苯為基礎的閃爍液更好，因為只要是放射活性低于規定量，前者毒性較小，可以與大量的水一起倒入水池 中。對于懸浮培養的細胞，在第 5 步用 1000 g 離心 l0 min ，去除培養基，除了第 9 步外 6，7 ，8 也須重復此步驟，第 9 步的培養板也可在磷光成像儀（phosphorimager) 上直接定量測定。                                                                  

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