質粒轉染大腸桿菌可應用于:(1)細菌株的構建;(2)細胞工程;
| 實驗方法原理 | 感受態細胞易于接受外來基因成為重組細胞,實驗將質粒加入有感受態細胞的培養皿中,熱擊處理進行質粒轉染。 |
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| 實驗材料 | |
| 試劑、試劑盒 | 鏈霉素青霉素FCSPBS胰酶EDTA轉染試劑(Lipofectamine TM2000)胰化蛋白胨酵母提取物瓊脂NaClNaOH氨芐青霉素卡那霉素質粒提取試劑盒 |
| 儀器、耗材 | |
| 實驗步驟 | 一、轉染
2. 加入質粒 DNA 溶液(含量不超過 50ng,體積不超過 10μl),輕輕搖勻,冰上放置 30 分鐘后。 3.42℃ 水浴中熱擊 45s/90s,熱擊后迅速置于冰上冷卻 3-5 分鐘。 4. 向管中加入 1 mlLB 液體培養基(不含 Amp),混勻后 37℃ 振蕩培養 1 小時,使細菌恢復正常生長狀態,并表達質粒編碼的抗生素抗性基因(Ampr)。 5. 將上述菌液搖勻后取 100μl 涂布于含 Amp 的篩選平板上,正面向上放置半小時,待菌液完全被培養基吸收后倒置培養皿,37℃ 培養 16-24 小時。 6.在轉染的同時應做兩個對照: 對照組 1:以同體積的無菌雙蒸水代替 DNA 溶液,其它操作與上面相同。此組正常情況下在含抗生素的 LB 平板上應沒有菌落出現。 對照組 2:以同體積的無菌雙蒸水代替 DNA 溶液,但涂板時只取 5μl 菌液涂布于不含抗生素的 LB 平板上,此組正常情況下應產生大量菌落。 二、轉染大腸桿菌的擴增
2. 取上述培養液置于冰中 10 min,之后轉移到已滅菌的 50 ml 離心管中再于冰上放置 5 min 3. 于 4℃ 離心,2700rmp,10 min,棄上清,收集細菌 4. 質粒的提取 準備大腸桿菌質粒提取盒和擴增的帶質粒大腸桿菌培養液 5. 質粒鑒定(瓊脂糖凝膠電泳) 三、質粒轉染細胞株的建立
2.對于每個轉染樣品,按下面的方法準備: (1)用 50 uL Opti-MEM 稀釋 0.8 ug 質粒 DNA,輕輕吹吸 3 - 5 次混勻,室溫下靜置 5 min。 (2)輕輕顛倒混勻轉染試劑,用 50 uL Opti-MEM 稀釋 2.0 uL Lipofectamine TM2000,輕輕吹吸 3 - 5 次混勻,室溫下靜置 5 min。 (3)混合轉染試劑和質粒 DNA 稀釋液,輕輕吹吸 3 - 5 次混勻,室溫下靜置 20 min。注: 轉染復合物一旦形成,應立即加入培養皿中進行細胞轉染。 (4) 轉染復合物加入到 24 孔細胞板中,100 uL/孔,前后輕搖細胞板混合均勻。 (5) 將細胞板置于 37℃、5% CO2培養箱中培養 6 h 左右,進行換液,換成含 10% 血清的普通培養基,在 37℃,5%CO2 孵育箱中繼續培養 24 h 左右。 四、穩定轉染細胞株的篩選 1.從 37℃,5%CO2孵育箱中取出培養皿,棄去含轉染試劑的培養基,用 PBS 沖洗細胞 2 遍,胰蛋白酶消化,接種 1/2 的細胞到 100 mm 培養皿中,加入含 500 ug/ml G418 的新鮮培養基,每 2-3 天更換一次新的篩選培養基,每天觀察細胞的死亡情況。 2.當正常細胞完全死亡后,換用新的不含 G418 的培養基培養。每天觀察細胞生長狀態。 3.在細胞達到 60% 匯合率時再用含 500 ug/ml G418 的培養基篩選一次。 4.當細胞達到 90% 以上匯合率時將細胞轉移至培養瓶中繼續培養(轉染后 10~12 天左右)。以后每隔 4~5 天再用含 500 ug/ml G418 的培養基篩選。 5.直到穩定表達轉染質粒的細胞達到一定數量后可以收集樣品(約轉染后 15 天左右)。以后繼續培養時加入的 G418 濃度降一半。 |
| 注意事項 | 鋪板時要將細胞消化完全混勻,避免細胞堆積生長。 |
| 其他 | 1.LB 培養基的配制:在 950 ml 去離子水中加入:胰化蛋白胨 10 g,酵母提取物 5 g,NaCl10 g,搖動容器直至溶質溶解。用 5mol/LNaOH 調 pH 至 7.0,用去離子水定容至 1L,在 15psi 高壓下蒸汽滅菌 20 min。 2.LB 固體培養基及倒板: (1)配制:100 mlLB 培養基加入 1.5 g 瓊脂粉 (2)抗生素的加入:高壓滅菌后,將融化的 LB 固體培養基置與 55℃ 的水浴中,待培養基溫度降到 55℃ 時(手可觸摸)加入氨芐抗生素(終濃度為 50 μg/ml),以免溫度過高導致抗生素失效,并充分搖勻。 (3)倒板:一般 10 ml 倒 1 個板子。培養基倒入培養皿后,打開蓋子,在紫外下照 10-15 分鐘。 (4)保存:用封口膠封邊,并倒置放于 4℃ 保存,一個月內使用。 |