透射電鏡標本取材的基本要求

取材的基本要求如下： 

組織從生物活體取下以后，如果不立即進行及時固定處理，就有可能出現缺血缺氧后的細胞超微結構的改變，如細胞出現細胞器變性或溶解等現象，這些都可造成電鏡觀察中的人為假象，直接影響觀察結果分析，甚至導致實驗失敗。此外，由于處理不當造成組織微生物污染，導致細胞的超微結構結構遭受破壞。 

因此，為了使細胞結構盡可能保持生前狀態，取材成敗是關鍵，取材成功的關鍵在于操作者必須要注意把握“快、小、冷、準”四個取材要點。 

(1)．快：就是指取材動作要迅速，組織從活體取下后應在最短時間 (爭取在1～2分鐘之內)投入前固定液。對于實驗動物，最好在斷血流、斷氣之前就進行取材，以免缺血缺氧后使細胞代謝發生改變而破壞細胞的超微結構。當然，最好是采用灌注固定法。為了使前固定的效果更佳，組織塊要充分和固定液混合，應采用振蕩固定10分鐘以上，有條件的可采用微波固定法固定。 

(2)．小：由于常用的固定劑滲透能力較弱，組織塊如果太大，塊的內部將不能得到良好的固定。因此所取組織的體積要小，一般不超過1mm3。為便于定向包埋，可將組織修成大小約1mm×1mm×2mm長條形。 

(3)．冷：為了防止酶對自身細胞的酶解作用，取材操作最好在低溫(5℃～15℃)環境下進行，這樣可以降低酶的活性，防止細胞自溶。所采用的固定劑以及取材器械要預先在冰箱(5℃）中存放一段時間。 

(4)．準：就是取材部位要準確，這就要求取材者對所取的組織解剖部位要熟悉，必須取到與實驗要求相關的部位，不同實驗組別間要取相同部位，如需要定向包埋的標本，則要作好定向取材工作。 

此外，還要求操作動作輕柔，熟練，盡量避免牽拉、挫傷與擠壓對組織造成的人為損傷。