酵母的高效轉化
1．接種5ml液體YPAD或10ml SC，30℃下振蕩培養過夜。
2．計數過夜培養物細胞密度，以最終5×106個/ml的細胞密度接種50ml YPAD培養液。
3．置30℃，200r/min振蕩培養至2×107個細胞/ml，通常需要3～5小時，該培養物的細胞足夠供十次轉化用。
4．用50ml無菌離心管以3000g（2500r/min）離心5分鐘，收獲細胞。
5．棄培養液，把細胞懸浮在25ml無菌水中，再同上離心。
6．棄水，把細胞懸浮在1ml的100mmol/L醋酸鋰中，轉懸浮物到一個無菌1.5ml離心管。
7．高速離心5秒鐘沉淀細胞，用微量移液器吸出醋酸鋰。
8．懸浮細胞到最終500μl體積其中大約含400μl的100mmol/L醋酸鋰。
9．將1ml單鏈載體DNA樣品煮沸5分鐘，快速在冰水中冷卻。
10． 振蕩細胞懸浮液，取50μl樣品加到標記的離心管中，離心沉淀細胞，用微量取樣器除去醋酸鋰。
11． 基本“轉化混合液”由下列成分組成，小心按下列順序如下：
240μl PEG（50% w/v）
36μl 1.0mol/L 醋酸鋰
25μl 單鏈載體DNA（2.0mg/ml）
50μl 水和質粒DNA（0.1～10μg）
12． 劇烈振蕩每個反應管每個反應管直到細胞完全混勻，通常需要1分鐘左右。
13． 置30℃保溫30分鐘。
14． 置42℃水浴中熱激20～25分鐘。
15． 以6000～8000r/min離心15秒，用微量移液器除去轉化混合液。
16． 吸0.2～1.0ml無菌水加到每個反應管中，用移液器上下輕輕抽提以懸浮沉淀。
17． 用等份的200μl轉化混合液涂選擇平板。