采用Trizol溶液提取細菌總RNA

實驗概要

了解用Trizol 溶液提取細菌總 RNA的方法。

實驗原理

Trizol主要物質是異硫氰酸胍，它可以破壞細胞使RNA釋放出來的同時，保護RNA的完整性。加入氯仿后離心，樣品分成水樣層和有機層。RNA存在于水樣層中。收集上面的的水樣層后，RNA  可以通過異丙醇沉淀來還原。無論是人、動物、植物還是細菌組織，Trizol法對少量的組織(50-100 mg)和細胞(5×10⁶)以及大量的組織(≧1   g)和細胞(>107)均有較好的分離效果。Trizol試劑操作上的簡單性允許同時處理多個的樣品。所有的操作可以在一小時內完成。Trizol抽提的總RNA能夠避免DNA和蛋白的污染。故而能夠作RNA  印跡分析、斑點雜交、poly(A)  選擇、體外翻譯、RNA酶保護分析和分子克隆。

主要試劑

Trizol 溶液

氯仿

異丙醇

75%乙醇

DEPC

主要設備

超凈工作臺

1.5 mL離心管

移液槍

紫外分光光度計

石英比色皿

泳槽和模具

電泳儀

凝膠成像系統

實驗材料

大腸桿菌

實驗步驟

1. 采用 Trizol 溶液提取細菌的總 RNA

    (1)挑取工程菌單菌落，培養至穩定期，取菌液 3 mL 離心得菌體于1.5 mL離心管；

    (2)每管加入 1 mL Trizol 溶液，蓋緊管蓋，激烈振蕩15 s，室溫靜置5 min；

    (3)4℃，12000 g，離心 10 min；

    (4)取上清轉入（約 1 mL）新的 1.5 m L離心管中；

    (5)每管加入 0.2 mL 的氯仿（0.2 體積 Trizol），蓋緊蓋，劇烈振蕩 15 s；

    (6)室溫靜置 3 min；

    (7)4℃, 12000 g, 離心 10 min；

    (8)小心吸取上層水相，轉入另一新的 1.5 mL 離心管，測量其體積；

    (9)加入1倍體積的氯仿，蓋緊蓋，劇烈振蕩 15 s；

    (10)室溫靜置 3 min；

    (11)4℃，12000 g，離心 10 min；

    (12)小心吸取上層水相，轉入另一已編號新的 1.5 mL 離心管；

    (13)加入 0.5 mL 的異丙醇（0.5 體積 Trizol），輕輕顛倒混勻；

    (14)室溫，靜置 10 min；

    (15)4℃，12000 g，離心 10 min，RNA 沉于管底；

    (16)小心吸去上清，加1 mL75%的乙醇（預冷），并輕柔顛倒，洗滌沉淀；

    (17)4℃，7500 g，離心 5 min；

    (18)小心棄上清，微離，吸去剩余乙醇，室溫干躁 10 min；

    (19)各管用 50 μL DEPC 處理過的雙蒸去離子水溶解，55-60℃溫育5 min，分裝，-80℃貯存（可貯存5周）；

2. RNA 濃度的測定

取 10 μL RNA 樣品以雙蒸水稀釋至 2  mL，轉入預先以無水乙醇隔夜浸泡后晾干的石英比色皿中，小心排除氣泡，以等體積的雙蒸水作為空白對照，在紫外分光光度計中分別測定 260  nm、280 nm、360 nm（參比波長）的光吸收值，根據公式計算 RNA 的濃度。

RNA 濃度（μg/μL）= OD₂₆₀ × 稀釋倍數（200）× 40（μg/mL）/1000

純 RNA 樣品的 OD₂₆₀/OD₂₈₀ 比值為 1.8~2.0，若低于該值，表明存在蛋白質污染，可重新用酚∕氯仿抽提。該值為 2.0 時，RNA 純度為最高。

3. RNA 質量檢測

將 RNA 進行瓊脂糖凝膠電泳檢測，目的在于檢測 28 S 和 18 S 條帶的完整性和它們的比值，或者是 mRNA smear  的完整性。一般認為，如果 28 S和18 S 條帶明亮、邊緣清晰，并且18 S的亮度在 18 S 條帶的兩倍以上，則 RNA的質量較好。

    (1)將洗凈、干燥的電泳槽和模具，水平放置在工作臺上;

    (2)準確稱取 0.15 g瓊脂糖加入 15 mL 1 × TAE 中，搖勻，在微波爐內將瓊脂糖溶液以最短時間完全溶解（中火檔 2 min），待冷卻至60℃時，加入 GoldView（終濃度為 5 μL/mL），充分混勻;

    (3)插入適當的梳子，將溫熱的凝膠倒入膠模中，凝膠厚度為 3~5 mm，置于室溫下凝固（約 30 min）;

    (4)待凝膠凝固后，小心移去梳子，將凝膠置于電泳槽中，加入電泳緩沖液，使液面高出凝膠 1~2 mm;

    (5)用微量移液器將樣品與上樣緩沖液混合并將混合液小心加入上樣孔內，同時加入合適分子量范圍的 DNA 分子量標準作為對照;

    (6)蓋上電泳槽蓋，調節電壓 100 V，電泳 40 min 左右;

    (7)電泳完畢后將凝膠置于紫外透射檢測儀上觀察結果，用凝膠成像系統照相保存。

注意事項

1.  提取時要做到超凈臺內操作、操作帶一次性手套、EP管及Tip頭都要用0.1%處理（0.1%  DEPC浸泡過夜后，高壓蒸氣滅菌）、小心、細致、晃動及每次移液要輕。這樣做的唯一目的就是兩個，一是小心RNAse的污染降解RNA；二是動作過度暴力破壞RNA的完整性。

2. 一般RNA電泳應該是做甲醛變性電泳，但是一般的瓊脂糖電泳也可以，需要上樣量稍微大些，并且跑電泳的時間越短越好（這樣也是為了減少外界RNAse對RNA的降解），跑完電泳立刻觀察。