細胞凋亡時主要的生化特征是其染色質發生濃縮， 染色質DNA在核小體單位之間的連接處斷裂， 形成50~300kbp長的DNA大片段，
或180~200bp整數倍的寡核苷酸片段， 在凝膠電泳上表現為梯形電泳圖譜（DNA
ladder）。細胞經處理后，采用常規方法分離提純DNA,進行瓊脂糖凝膠和溴化乙啶染色，在凋亡細胞群中可觀察到典型的DNA
ladder.如果細胞量很少，還可在分離提純DNA后，用32P-ATP和脫氧核糖核苷酸末端轉移酶（TdT）使DNA標記，然后進行電泳和放射自顯影，觀察凋亡細胞中DNA
ladder的形成。
1. 大分子染色體DNA片段的測定
細胞凋亡的早期，染色體斷裂成為50~300kbp長的DNA大片段。所有超過一定分子量大小的雙鏈DNA分子在瓊脂糖凝膠中的遷移速度相同。線性
DNA的雙螺旋半徑超過凝膠半徑時，即達到分辨力的極限。此時凝膠不再按分子量的大小來篩分DNA,DNA像通過彎管一樣，以其一端指向電場一極而通過凝膠，這種遷移模式稱之為“爬行”.因此，細胞凋亡早期產生的50~300kbp長的DNA大片段不能用普通的瓊脂糖凝膠電泳來分離。通常采用脈沖電泳技術可圓滿地解決這一問題。這個方法是在凝膠上外加正交的交變脈沖電場。每當電場方向改變后，大的DNA分子便滯流在爬行管中，直至新的電場軸向重新定向后，才能繼續向前移動。DNA分子量越大，這種重排所需要的時間就越長。當DNA分子變換方向的時間小于電脈沖周期時，DNA就可以按其分子量大小分開。
參考文獻 Brown,D.G., Sun, X.M., and Cohen, G.M.（1993） Dexamethasone-induced
apoptosis involves cleavage of DNA to large fragments prior to
internucleosomal fragmentation. J. Biol.Chem. 268, 3037-3039
2. DNA Ladder 測定
方法：收獲細胞（1′107）沉淀，細胞裂解液，13000rpm′5min,
收集上清，1%SDS和RnaseA（5mg/ml）56°C，2h，蛋白酶K（2.5mg/ml）37°C，2h，1/10體積3M醋酸鈉和2.5倍體積的冷無水乙醇沉淀DNA，4°C過夜，14000rpm′15min，最后將沉淀溶解在TE
buffer中，加DNA Loading Buffer，1.2%瓊脂糖凝膠電泳，EB染色并照相。
結果：[圖6]
參考文獻 Herrmannm M, Lorenz HM, Voll R et al. A Rapid and simple method
for the isolation of apoptotic DNA fragments. Nucleic Acid Res. 1994;
22:5506-5507
3. 凋亡細胞DNA含量的流式細胞計分析
方法：收集細胞，70%冷乙醇（in PBS）4°C固定過夜，PBS洗滌，1000rpm′10min?RNase
A（0.5mg/ml）37°C消化30min，PI（50mg/ml）染色，室溫避光15min，FACScan分析DNA亞二倍體的形成及細胞周期的變化。
結果：[圖7]
4. ApoAlertTM LM-PCR Ladder Assay （CLONTECH）
優點：敏感度高，適合于檢測少量樣本，小部分凋亡細胞。如臨床活組織檢測