RNA 抽提的“三大紀律八項注意”
紀律一:杜絕外源酶的污染。
注意一:嚴格戴好口罩,手套。
注意二:實驗所涉及的離心管,Tip 頭,移液器桿,電泳槽,實驗臺面等要徹底處理。
注意三:實驗所涉及的試劑/溶液,尤其是水,必須確保 RNase-Free。
紀律二:阻止內源酶的活性
注意四:選擇合適的勻漿方法。
注意五:選擇合適的裂解液。
注意六:控制好樣品的起始量。
紀律三:明確自己的抽提目的
注意七:任何裂解液系統在接近樣品最大起始量時,抽提成功率急劇下降。
注意八:RNA 抽提成功的唯一經濟的標準是后續實驗的一次成功,而不是得率。
Rnase 污染的10大來源
1:手指頭 – 手指頭是外源酶的第一來源,所以必需戴手套并且頻繁更換。另外,口罩也必需戴,因為呼吸也是一個重要的酶來源。戴手套口罩的另外的好處是保護實驗人員。
2:槍頭,離心管,移液器 – 單純的滅菌是不能滅活 Rnase 的,所以槍頭和離心管要用 DEPC 處理,即使是標明為 DEPC 處理過的。移液器最好是專用的,用前用 75% 的酒精棉球搽拭干凈,尤其是桿子;另外,一定不要使用褪頭器。
3:水/緩沖液 – 一定要確保無 Rnase 污染。
4:實驗臺面 – 最起碼要用 75% 的酒精棉球搽拭干凈。
5:內源 Rnase – 所有組織均含內源酶,故組織用液氮速凍是降低降解的最好辦法。液氮保存/碾磨方法的確不方便,但對有一些內源酶含量很高的組織,卻是唯一的辦法。
6:RNA 樣品 – RNA 抽提產物可能都會含痕量的 Rnase 污染。
7:質粒抽提 – 質粒抽提往往用到 Rnase 降解 RNA,殘留的 Rnase 要用 Proteinase K 消化,PCI 抽提。
8:RNA 保存 – 即使低溫保存,痕量的 Rnase 亦會導致 RNA 降解。長期保存 RNA 的最好辦法是鹽/醇懸液,因為醇在低溫時抑制所有的酶活性。
9:陽離子 (Ca, Mg) – 在含這些離子時,80C 加熱 5 分鐘會導致 RNA 被剪切,故如果 RNA 需要被加熱,保存液需要含螯合劑 (1mM Sodium Citrate, pH 6.4)。
10:后續實驗所用的酶 – 酶均有可能被 Rnase 污染。
RNase 和 DEPC 處理
1:高壓滅菌是可以滅活部分 Rnase A 的。實驗證明:37 C 與 RNA 反應,沒有滅菌的 PBS,活性點為 100 pg/ml;滅菌后,活性點為 100 ng/ml。當然,滅菌后 Rnase 仍然不能認為沒有殘留。
2:DEPC 在水中半衰期為 30 分鐘。0.1% 的 DEPC 滅菌 15 分鐘可以認為徹底破壞了 DEPC。破壞后可以聞到一點氣味。
3:在1M Tris, 1M HEPES, 1M MOPS 中分別加入 1ug/ml Rnase A 和 0.1% 及 1% DEPC 實驗。結果提示,0.1% DEPC 只對 MOPS 有效,而 1% DEPC 對三種試劑都有效。
4:0.01% DEPC,0.1% DEPC,1% DEPC 有效去除 Rnase A 的濃度分別為:100 ng/ml,500ng/ml,1 ug/ml。但要注意,DEPC 滅活后的副產品,對有些后續實驗是有影響的。
RNA 抽提的10大竅門
1:快速阻止 Rnase 活性 – 樣品收集后快速冷凍,裂解時快速操作滅活 Rnase。
2:選擇合適的抽提方法 – 高核酶含量的組織,脂肪組織最好用含苯酚的方法。
3:預判質量要求 – Northern,cDNA 文庫構建對完整性要求高,RT-PCR, RPA (Ribonuclease protection assay) 對完整性要求不是很高。RT-PCR 對純度 (酶抑制物殘留) 要求很高。
4:徹底勻漿是提高得率和降低降解的關鍵。
5:檢查 RNA 的完整性 – 電泳檢測,28S:18S =2:1 是完整的標志,1:1 對大部分實驗也是可以接受的。
6:去除 DNA – 用于 RT-PCR, array analysis 最好用 Dnase I 去除 DNA。
7:降低外源酶的污染 – 不能從外面又導入酶。
8:低濃度的核酸濃縮時,要加入助沉淀試劑。但要防止助沉淀劑含酶及 DNA 污染。
9:徹底溶解 RNA,必要時可以 65C 加熱 5 分鐘。
10:合適的保存方法 – 短時間可以 –20C 保存,長期請保存于 –80C。
提高 RNA 得率
首先要意識到不同得樣品其 RNA 含量差別很大。高豐度 (2-4ug/mg) 的如肝臟,胰腺,心臟,中豐度 (0.05-2ug/mg) 的如腦,胚胎,腎臟,肺,胸腺,卵巢,低豐度 (<0.05ug/mg) 的如膀胱,骨,脂肪。
1:裂解細胞使 RNA 釋放出來 – RNA 如果不被釋放出來,得率是會降低的。電動勻漿比其它勻漿方法效果更好,但也可能需要結合其它得方法,如液氮搗碎,酶消化 (Lysozyme/Lyticase)
2:抽提方法的優化。基于苯酚的方法的最大問題是分層不徹底和部分 RNA
的丟失(不能全部將上清取出)。分層不徹底是因為核酸和蛋白質含量高,可以用增加裂解液使用量或者降低樣品量解決。脂肪組織要增加一步氯仿抽提。RNA
的丟失可以用反抽方法或者去除有機層后再離心的方法降低。基于柱離心式方法的最大問題是樣品過量。
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