（一）試劑準備
1 ． TRIzol 試劑。
2 ．氯仿
3 ．異丙醇
4 ． 75% 乙醇（ DEPC H2O 配制）
5 ． DEPC H2O
（二）操作步驟
1 ． 樣品處理：
（１）培養細胞：收獲細胞 1-5×10 7 ，移入 1.5ml 離心管中，加入 1ml Trizol ，混勻，室溫靜置 5min 。
（２）組織：取 50-100mg 組織（新鮮或 -70 ℃ 及液氮中保存的組織均可）置 1.5ml 離心管中，加入 1ml Trizol 充分勻漿，室溫靜置５ min 。
2 ．加入 0.2ml 氯仿，振蕩 15s ，靜置 2min 。
3 ． 4 ℃ 離心， 12000g × 15min ，取上清。
4 ．加入 0.5ml 異丙醇，將管中液體輕輕混勻，室溫靜置 10min 。
5 ． 4 ℃ 離心， 12000g × 10min ，棄上清。
6 ．加入 1ml 75% 乙醇，輕輕洗滌沉淀。 4 ℃ ， 7500g × 5min ，棄上清。
7. 晾干，加入適量的 DEPC H 2 O 溶解（ 65 ℃ 促溶 10-15min ）。
（三）注意事項
1 ．樣品量和 Trizol 的加入量一定要按步驟（ 1 ）的比例，不能隨意增加樣品量或減少 Trizol 量，否則會使內源性 RNase 的抑制不完全，導致 RNA 降解。
2 ．實驗過程必須嚴格防止 RNsae 的污染。
二、總 RNA 定量
RNA 定量方法與 DNA 定量相似。 RNA 在 260nm 波長處有最大的吸收峰。因此，可以用 260nm 波長分光測定 RNA 濃度，
OD 值為 1 相當于大約 40 μ g/ml 的單鏈 RNA 。如用 1cm 光徑，用 ddH 2 O 稀釋 DNA 樣品 n 倍并以 ddH
2 O 為空白對照，根據此時讀出的 OD 260 值即可計算出樣品稀釋前的濃度：
RNA （ mg/ml ） =40 × OD 260 讀數×稀釋倍數 (n)/1000
RNA 純品的 OD 260 /OD 280 的比值為 2.0 ，故根據 OD 260 /OD 280 的比值可以估計 RNA 的純度。若比值較低，說明有殘余蛋白質存在；比值太高，則提示 RNA 有降解。