重組DNA分子的轉化實驗原理和實驗步驟（二）
1.1.4接合轉化接合（Conjugation）是指通過細菌細胞之間的直接接觸導致DNA從一個細胞轉移至另一個細胞的過程。這個過程是由結合型質粒完成的，它通常具有促進供體細胞與受體細胞有效接觸的接合功能以及誘導DNA分子傳遞的轉移功能，兩者均由接合型質粒上的有關基因編碼。在DNA重組中常用的絕大多數載體質粒缺少接合功能區，因此不能直接通過細胞接合方法轉化受體細胞，然而如果在同一個細胞中存在著一個含有接合功能區域的輔助質粒，則有些克隆載體質粒便能有效地接合轉化受體細胞。因此，首先將具有接合功能的輔助質粒轉移至含有重組質粒的細胞中，然后將這種供體細胞與難以用上述轉化方法轉化的受體細胞進行混合，促使兩者發生接合作用，最終導致重組質粒進入受體細胞。1.2轉化率及其影響因素轉化率是轉化（包括感染）效率的評估指標，通常有兩種形式表征轉化率，一是在待轉化DNA分子數大于受體細胞數的條件下，轉化細胞與細胞總數之比，例如在標準條件下，利用Ca2 ......閱讀全文
重組DNA分子的轉化實驗原理和實驗步驟（二）
1.1.4接合轉化接合（Conjugation）是指通過細菌細胞之間的直接接觸導致DNA從一個細胞轉移至另一個細胞的過程。這個過程是由結合型質粒完成的，它通常具有促進供體細胞與受體細胞有效接觸的接合功能以及誘導DNA分子傳遞的轉移功能，兩者均由接合型質粒上的有關基因編碼。在DNA重組中常用的絕大多數
重組DNA分子的轉化實驗原理和實驗步驟（一）
1實驗原理DNA重組分子在體外構建完成后，必須導入特定的受體細胞，使之無性繁殖并高效表達外源基因或直接改變其遺傳性狀，這個導入過程及操作統稱為重組DNA分子的轉化。對于不同的受體細胞，往往采取不同的轉化戰略。1.1 DNA重組分子的常用轉化方法1.1.1 Ca 2 誘導轉化1970年Mandel和H
重組DNA的轉化實驗原理和操作步驟
實驗目的制備出感受態細胞，把體外重組的DNA引入受體細胞，使受體菌具有新遺傳性，并從中選擇出轉化子。實驗原理感受態就是細菌吸收轉化因子的生理狀態，只有發展為感受態的細胞才能穩定攝取外來的DNA分子。pUC18的LacZ基因區域當有DNA片段插入時，LacZ基因失活，轉化進入大腸桿菌并在含有IPTG和
DNA重組技術(Recombinant－DNA)實驗原理、用品和步驟（二）
【實驗步驟】 1．PCR產物純化 PCR產物經瓊脂糖凝膠電泳，應用凝膠回收試劑盒回收純化目的DNA片段。 2．目的DNA片段連接至T/A克隆載體 即重組DNA分子的構建 反應體系及條件如下： 3．轉化 3.1 將感受態細胞置冰中融解。 3.2 將60μl感受態細胞移至無菌
DNA的重組連接實驗原理和步驟
一、實驗目的 用T4DNA連接酶將載體pBR322 EcoR Ⅰ-CIP處理的DNA片段，與目的基因5.4KbEcoR Ⅰ片段連接起來，構建體外重組DNA分子，同時學習幾種DNA連接的方法。 二、實驗原理 重組的DNA分子是在T4DNA連接酶的作用下，有Mg
DNA重組技術(Recombinant－DNA)實驗原理、用品和步驟（一）
【實驗原理】1．DNA重組技術重組DNA(Recombinant DNA)技術是遺傳工程的核心技術，也是人類在基因和DNA分子水平進行操作的技術。它包括以下幾個步驟： 1）重組DNA分子的構建：即將目的基因（DNA或cDNA片段）與載體DNA重組，應用TA克隆方法,將PCR擴增產物快速克隆至質粒
DNA的定量實驗原理和步驟
一、 實驗原理核酸分子（DNA或RNA）由于含有嘌吟環和嘧啶環的共軛雙鍵，在260 nm波長處有特異的紫外吸收峰，其吸收強度與核酸的濃度成正比，這個物理特性為測定核酸溶液濃度提供了基礎。1 OD260相當于dsDNA 50 ug/ml，ssDNA 33 ug/ml和ssRNA 40 ug/ml。可以
DNA重組實驗中常用的技術（二）
DNA的重組 （一）DNA的酶切與連接 （1）酶切反應 同質粒DNA的鑒定，只不過是質粒DNA換為載體DNA。若大量酶切，則成比例增加。 （2）加2倍體積的預冷無水乙醇和1/10體積的3mol/l NaAc混勻，-20℃2h以上。 （3）15000rpm離心15min，棄上清。 （4）加
重組質粒（dna－recombinant－plasmid）的篩選實驗步驟
實驗儀器控溫搖床水浴鍋 冰箱（-20,‐70℃） 超凈工作臺 培養箱 實驗試劑 Amp LB IPTG X-Gal 平皿 玻棒 三角瓶 離心管 移液器 tip 實驗步驟： 20人／班 1平皿／人 挑取可疑的白色菌落，移植于2mL的LB中，250轉/分搖菌、37℃培養過夜。以快
PCR擴增分離目的DNA片段實驗原理、材料和步驟（二）
三、材料（一）儀器與器皿PRC 擴增儀（PE2400），瓊脂糖凝膠電泳設備，微量取樣器，一次性指形管，凝膠成像儀,玻片（二）試劑與材料1．瓊脂糖凝膠電泳試劑1）電泳緩沖液：Tris—乙酸0.04mol/L PH8.0? 0.002mol/L EDTA2）加樣緩沖液：0.25%溴酚蘭40% w/v蔗糖
粗提取植物DNA的實驗步驟和原理
提取植物DNA常用的方法是CTAB法。原理：CTAB是一種陽離子去污劑,具有從低離子強度溶液中沉淀核酸與酸性多聚糖的特性。在高離子強度的溶液中(>0.7mol/L NaCl)，CTAB與蛋白質和多聚糖形成復合物，只是不能沉淀核酸。通過有機溶劑抽提，去除蛋白，多糖，酚類等雜質后加入乙醇沉淀即可使核酸分
DNA的酶切實驗原理和操作步驟
一、實驗目的 本實驗學習、了解限制性內切酶的特性，學習根據具體目的設計適當的酶切體系并實施之。 二、實驗原理 利用限制性內切酶切割DNA是DNA重組過程中的關鍵步驟之一。成功的酶切為后續工作提供了有效的實驗材料。限制性內切酶是細菌體內限制修
重組DNA轉化
目的：在體外連接組裝而成的重組DNA分子只能轉入合適的受體細胞，才能大量地進行復制、增殖和表達。通過實驗學會重組DNA轉化的最基本的操作以及如何提高轉化效率的基本思路。?原理：帶有外源DNA片段的重組體分子在體外構建成后，需要導入適當的宿主細胞內進行繁殖或表達出具有一定生物活性的蛋白。能夠作為重組體
噬菌體轉導實驗原理、材料和實驗步驟（二）
四、實驗步驟 1、噬菌體的誘導和裂解液的制備 （ 1 ） 供菌體的活化與培養：取一環供體菌，接種于盛有 5 ml 肉湯液體培養基的三角瓶中， 37 ℃培養 16 h 后，吸 0.5 ml 菌液，接種于盛有 4.5 ml 肉湯液體培養基的三角瓶中，繼續培養 4-6 h 。 （
DNA的轉化實驗
體外通過基因工程手段所構建的含目的基因的重組質粒，選用轉化和篩選技術， 可獲得含重組的陽性克隆。在此陽性克隆中，DNA可在生物體系中大量擴增，繁殖， 保存以及表達目的基因的產物，這是ＰＣＲ體外擴增DNA所不能替代的。配合DNA重組技術，所獲得的，不同目的需要的陽性菌株已廣泛應用于科研，醫藥生產和生物
MTT實驗原理和實驗步驟
MTT原理：MTT全稱為3-(4,5)-dimethylthiahiazo (-z-y1)-3,5-di- phenytetrazoliumromide，是一種黃顏色的染料。活細胞線粒體中琥珀酸脫氫酶能夠代謝還原MTT，同時在細胞色素C的作用下，生成藍色（或藍紫色）不溶于水的甲臜（Formaza
PCR擴增DNA（PCR－Amplify－DNA）實驗原理、材料和操作步驟
【實驗原理】聚合酶鏈反應（polymerasechainreaction，PCR）是一種體外 DNA擴增技術，1985年由Mullis等人創立。該技術能在幾小時的實驗操作中，將人為選定的一段DNA擴增幾百萬倍，具有靈敏度高、特異性強、操作簡便和應用廣泛等優點，目前已成為分子生物學及基因工程中極為
重組DNA的轉化和藍白篩選
體外連接的重組DNA分子導入合適的受體細胞才能進行大量復制，增殖和表達，其首要目的是獲得大量的克隆基因。雖然PCR技術，體外轉錄及翻譯系統能部分達到大量擴增的目的，但畢竟受到體外操作的許多限制。重組質粒導入宿主細胞最常用的方法之一就是轉化（transformation）。轉化這一概念來源于遺傳學：細
DNA重組實驗方法
[實驗原理]DNA重組是將外源DNA與載體分子連接，這樣重新組合的DNA叫做重組體或重組子。DNA重組的方法主要有粘端連接法和平端連接法。 重組的DNA分子是在DNA連接酶的作用下，有Mg2+、ATP存在的連接緩沖系統中，將分別經酶切的載體分子與外源DNA分子進行連接。常用的DNA連接酶是T4噬
質粒－DNA－的轉化實驗
實驗方法原理轉化活性是檢測質粒生物活性的重要指標，在基因克隆技術中，轉化（transformation）是特指以質粒 DNA 或以它為載體構建的重組質粒 DNA（包括人工染色體）導入細胞的過程， 是一種常用的基本實驗技術。 該過程的關鍵是受體細胞的遺傳學特性及其所處的生理狀態，用于轉化的受體細胞一般
質粒－DNA－的轉化實驗
實驗方法原理 轉化活性是檢測質粒生物活性的重要指標，在基因克隆技術中，轉化（transformation）是特指以質粒 DNA 或以它為載體構建的重組質粒 DNA（包括人工染色體）導入細胞的過程， 是一種常用的基本實驗技術。 該過程的關鍵是受體細胞的遺傳學特性及其所處的生理狀態，用于轉化的受
免疫組化實驗原理和步驟（二）
免疫組化問題解答1、染色過強?a 抗體濃度過高戒孵育時間過長 。降低抗體滴度、抗體孵育時間：室溫1小時、或4度過夜?b 孵育溫度過高超過37度。 一般在室溫20-28度 c DAB顯色時間過長戒濃度過高 顯色時間不超過5-12分鐘，以顯微鏡下觀察為準。2、非特異性背景染色a 操作過程中沖洗不充分 ：
快速細胞破碎法實驗步驟和轉化子DNA的酶切鑒定
快速細胞破碎法實驗步驟1、 挑取轉化平板上的單菌接種于含相應抗生素的2ml LB中，37℃振蕩培養至A590值為0.6～0.8。2、 取1ml菌液至1.5ml Eppendorf管中，9000rpm離心9min，去盡上清。3、 加入70μl Cracking Gel緩沖液[1mol/L Tris –
PCR擴增分離目的DNA片段實驗原理、材料和步驟
一、目的了解多聚合酶鏈反應DNA 擴增技術的基本原理和實驗應用，掌握PCR反應基本技術。二、原理PCR（Polymerase Chain Reaction）即聚合酶鏈式反應是1986 年由Kallis Mullis 發現。這項技術已廣泛地應用于分子生物學各個領域，它不僅可用于基因分離克隆和核
PCR擴增分離目的DNA片段實驗原理、材料和步驟
PCR擴增法實驗材料 DNA 模板 試劑、試劑盒 電泳緩沖液 加樣緩沖液 溴化乙錠溶液 瓊脂糖 TaqDNA 多聚酶 5′反應緩沖液
PCR擴增分離目的DNA片段實驗原理、材料和步驟
PCR（Polymerase Chain Reaction）即聚合酶鏈式反應是1986 年由Kallis Mullis 發現。這項技術已廣泛地應用于分子生物學各個領域，它不僅可用于基因分離克隆和核酸序列分析，還可用于突變體和重組體的構建，基因表達調控的研究，基因多態性的分析，遺傳病和傳染病診斷，腫瘤
elisa的原理和實驗步驟
ELISA的原理ELISA的基礎是抗原或抗體的固相化及抗原或抗體的酶標記。結合在固相載體表面的抗原或抗體仍保持其免疫學活性，酶標記的抗原或抗體既保留其免疫學活性，又保留酶的活性。在測定時，受檢標本(測定其中的抗體或抗原)與固相載體表面的抗原或抗體起反應。用洗滌的方法使固相載體上形成的抗原抗體復合物與
elisa的原理和實驗步驟
ELISA的原理ELISA的基礎是抗原或抗體的固相化及抗原或抗體的酶標記。結合在固相載體表面的抗原或抗體仍保持其免疫學活性，酶標記的抗原或抗體既保留其免疫學活性，又保留酶的活性。在測定時，受檢標本(測定其中的抗體或抗原)與固相載體表面的抗原或抗體起反應。用洗滌的方法使固相載體上形成的抗原抗體復合物與
wb實驗的原理和步驟
WB實驗是通過聚丙烯酰胺凝膠電泳（PAGE）將混合蛋白質樣品分離后，利用特殊虹吸或電場裝置印跡至固相介質（例如PVDF膜）上。再以固相載體上的蛋白質或多肽作為抗原，與相對應的第一抗體特異性結合，之后再與酶或同位素標記的第二抗體相結合，最終通過底物顯色或放射自顯影來檢測特異性目的基因表達的蛋白成分。
elisa的原理和實驗步驟
1. ELISA的原理 ELISA的基礎是抗原或抗體的固相化及抗原或抗體的酶標記。結合在固相載體表面的抗原或抗體仍保持其免疫學活性，酶標記的抗原或抗體既保留其免疫學活性，又保留酶的活性。在測定時，受檢標本（測定其中的抗體或抗原）與固相載體表面的抗原或抗體起反應。用洗滌的方法使固相載體上形成的抗原抗