1975年，Kohler和Milstein發現將小鼠骨髓瘤細胞和綿羊紅細胞免疫的小鼠脾細胞進行融合，形成的雜交細胞既可產生抗體，又可無限增殖，從而創立了單克隆抗體雜交瘤技術。這一技術上的突破不僅為醫學與生物學基礎研究開創了新紀元，也為臨床疾病的診、防、治提供了新的工具。
制備單克隆抗體包括動物免疫、細胞融合、選擇雜交瘤、檢測抗體、雜交瘤細胞的克隆化、凍存以及單克隆抗體的大量生產，要經過幾個月的一系列實驗步驟，下面按照制備單克隆抗體的流程順序，逐一介紹其實驗方法。
細胞融合前準備
細胞融合，選擇雜交瘤
抗體的檢測
雜交瘤的克隆化和凍存
單克隆抗體的大量生產
單克隆抗體的鑒定
影響因素、失敗原因分析
（一） 免疫方案
選擇合適的免疫方案對于細胞融合雜交的成功，獲得高質量的McAb至關重要。一般要在融合前兩個月左右確立免疫方案開始初次免疫，免疫方案應根據抗原的特性不同而定。
1. 顆粒性抗原免疫性較強，不加佐劑就可獲得很好的免疫效果。下面以細胞性抗原為例的免疫方案:
初次免疫 1×10７／0.5ml ip （腹腔內注射）
↓ 2～3周后
第二次免疫 1×10７／0.5ml ip
↓ 3周后
加強免疫（融合前三天） 1×10７／0.5ml ip或iv（靜脈內注射）
↓
取脾融合
2. 可溶性抗原免疫原性弱，一般要加佐劑，常用佐劑：福氏完全佐劑，福氏不完全佐劑。要求抗原和佐劑等體積混合在一起，研磨成油包水的乳糜狀，放一滴在水面上不易馬上擴散呈小滴狀表明已達到油包水的狀態。商品化福氏完全佐劑在使用前須振搖，使沉淀的分枝桿菌充分混勻。
初次免疫 Ag 1～50μg 加福氏完全佐劑皮下多點注射
│ （一般0.8～1ml 0.2ml／點）
↓3周后
第二次免疫 劑量同上，加福氏不完全佐劑皮下或ip
│ （ip劑量不宜超過0.5ml）
↓3周后
第三次免疫 劑量同上，不加佐劑，ip
│ （5～7天后采血測其效價，檢測免疫效果）
↓2～3周后
加強免疫，劑量50～500μg為宜，ip或iv
↓3天后
取脾融合
目前，用于可溶性抗原（特別是一些弱抗原）的免疫方案也不斷有所更新，如①將可溶性抗原顆粒化或固相化，一方面增強了抗原的免疫原性，另一方面可降低抗原的使用量。②改變抗原注入的途徑，基礎免疫可直接采用脾內注射。③使用細胞因子作為佐劑，提高機體的免疫應答水平，促進免疫細胞對抗原反應性。
（二） 飼養細胞
在制備單克隆抗體過程中，許多環節需要加飼養細胞，如：在雜交瘤細胞篩選、克隆化和擴大培養過程中，加入飼養細胞是十分必要的。常用的飼養細胞有：小鼠腹腔巨噬細胞（較為常用）、小鼠脾臟細胞或小鼠胸腺細胞，也有人用小鼠成纖維細胞系3T3經放射線照射后作為飼養細胞，使用比較方便，照射后可放入液氮罐長期保存，隨用隨復蘇。
小鼠腹腔巨噬細胞的制備
小鼠采用與免疫小鼠相同的品系，常用BaLb／c小鼠6～10周齡
↓
拉頸處死 浸泡于75％酒精，消毒3～5分鐘
↓
用無菌剪刀剪開皮膚，暴露腹膜
↓
用無菌注射器注入6～8ml培養液
↓
反復沖洗，吸出沖洗液
↓
放入10ml離心管，1200轉／分離心5～6分鐘
↓
用20％小牛血清（NCS）或胎牛血清（FCS）的培養液混懸，調整細胞數1×10５／ml
↓
加入96孔板，100μl／孔
↓
放入37℃ CO2孵箱培養
一般飼養細胞在融合前一天制備，一只小鼠可獲得5～8×106腹腔巨噬細胞，若用小鼠胸腺細胞作為飼養細胞時，細胞濃度為5×106／ml，小鼠脾細胞為1×106／ml，小鼠的成纖維細胞（3T3）1×105／ml，均為100μl／孔。
（三） 骨髓瘤細胞
骨髓瘤細胞系應和免疫動物屬于同一品系，這樣雜交融合率高，也便于接種雜交瘤細胞在同一品系小鼠腹腔內產生大量 McAb。
常用骨髓瘤細胞系有：NS1、SP2／0、X63 Ag8.653等。
骨髓瘤細胞的培養適合于一般的培養液，如RPMI1640，DMEM培養基。小牛血清的濃度一般在10～20％，細胞的zui大密度不得超10６／ml，一般擴大培養以1∶10稀釋傳代，每3～5天傳代一次。細胞的倍增時間為16～20小時，上述三株骨髓瘤細胞系均為懸浮或輕微貼壁生長，只用彎頭滴管輕輕吹打即可懸起細胞。
一般在準備融合前的兩周就應開始復蘇骨髓瘤細胞，為確保該細胞對HAT的敏感性，每3～6月應用8～AG（8氮雜鳥嘌呤）篩選一次，以防止細胞的突變。
保證骨髓瘤細胞處于對數生長期，良好的形態，活細胞計數高于95％，也是決定細胞融合的關鍵。
（四） 免疫脾細胞
免疫脾細胞指的是處于免疫狀態脾臟中B淋巴母細胞棗漿母細胞。一般取zui后一次加強免疫3天以后的脾臟，制備成細胞懸液，由于此時B淋巴母細胞比例較大，融合的成功率較高。
脾細胞懸液的制備：在無菌條件下取出脾臟，用不完全的培養液洗一次，置平皿中不銹鋼篩網上，用注射器針芯研磨成細胞懸液后計數。一般免疫后脾臟體積約是正常鼠脾臟體積的２倍，細胞數為２×10８左右。
（一） 細胞融合流程
（1） 取對數生長的骨髓瘤細胞SP2／0，1000rpm離心5分鐘，棄上清，用不完全培養液混懸細胞后計數，取所需的細胞數，用不完全培養液洗滌2次。
（2） 同時制備免疫脾細胞懸液，用不完全培養液洗滌2次。
（3） 將骨髓瘤細胞與脾細胞按1∶10或1∶5的比例混合在一起，在50ml塑料離心管內用不完全培養液洗1次，1200rpm,8分鐘。
（4） 棄上清，用滴管吸凈殘留液體，以免影響PEG的濃度。
（5） 輕輕彈擊離心管底，使細胞沉淀略加松動。
（6） 在室溫下融合:
① 30秒內加入預熱的1ml45％PEG（Merek,分子量4000）含5％DMSO，邊加邊攪拌。
② 作用90秒鐘，若冬天室溫較低時可延長至120秒鐘。
③ 加預熱的不完全培養液，終止PEG作用，每隔２分鐘分別加入1ml，2ml，3ml，4ml，5ml和10ml。
（7） 離心，800rpm，6分鐘。
（8） 棄上清，先用6ml左右20％小牛血清RPMI1640輕輕混懸，切記不能用力吹打，以免使融合在一起的細胞散開。
（9） 根據所用96孔培養板的數量，補加完全培養液，10ml一塊96孔板。
（10） 將融合后細胞懸液加入含有飼養細胞的96孔板，100μl／孔，37℃、5％CO2孵箱培養。
一般一塊96孔板含有1×107脾細胞。
（二） HAT選擇雜交瘤
應用HAT 選擇培養液篩選雜交瘤細胞的原理已在研究生專題講座第六專題中已經提到，這里主要介紹加HAT選擇培養的時間和濃度。
一般在融合24小時后，加HAT選擇培養液。HT和HAT均有商品化試劑50×貯存，用時1ml加入50ml20％小牛血清完全培養液中。
因為在培養板內已加入飼養細胞、融合后的細胞，200μl／孔。所以在加選擇培養液時應加3倍量的HAT。我們認為，融合后zui初補加的量可用全量的2／3進行選擇，可得到滿意的篩選結果。
50×HAT
H: 5×10-3M
A: 2×10-5M
T: 8×10-4M
一般選擇HAT選擇培養液維持培養兩周后，改用HT培養液，再維持培養兩周，改用一般培養液。
篩選雜交瘤細胞通過選擇性培養而獲得雜交細胞系中，僅少數能分泌針對免疫原的特異性抗體。一般在雜交瘤細胞布滿孔底1／10面積時，即可開始檢測特異性抗體，篩選出所需要的雜交瘤細胞系。
檢測抗體的方法應根據抗原的性質、抗體的類型不同，選擇不同的篩選方法，一般以快速、簡便、特異、敏感的方法為原則。
常用的方法有:
1. ELISA用于可溶性抗原（蛋白質）、細胞和病毒等McAb的檢測。
2. RIA用于可溶性抗原、細胞McAb的檢測。
3. FACS（熒光激活細胞分類儀）用于檢查細胞表面抗原的McAb檢測。
4. IFA用于細胞和病毒McAb的檢測。
上述方法均為一般實驗室的常規方法，故在此不介紹具體的實驗過程。
可靠的篩選方法必須在融合前建立，避免由于方法不當貽誤整個篩選時機。
克隆化一般是指將抗體陽性孔進行克隆化。犚r為經過HAT篩選后的雜交瘤克隆不能保證一個孔內只有一個克隆。在實際工作中，可能會有數個甚至更多的克隆，可能包括抗體分泌細胞、抗體非分泌細胞；所需要的抗體（特異性抗體）分泌細胞和其它無關抗體分泌細胞。要想將這些細胞彼此分開，就需要克隆化。克隆化的原則是，對于檢測抗體陽性的雜交克隆應盡早進行克隆化，否則抗體分泌的細胞會被抗體非分泌的細胞所抑制，因為抗體非分泌細胞的生長速度比抗體分泌的細胞生長速度快，二者競爭的結果會使抗體分泌的細胞丟失。即使克隆化過的雜交瘤細胞也需要定期的再克隆，以防止雜交瘤細胞的突變或染色體丟失，從而喪失產生抗體的能力。
（一） 克隆化方案
用克隆化的方法很多，而zui常用就是有限稀釋和軟瓊脂平板法。
1. 有限稀釋法的程序
① 制備飼養細胞懸液（同融合前準備）
② 陽性孔細胞的計數，并調細胞數在1～5×10３／ml
③ 取130個細胞放入6.5ml含飼養細胞完全培養液，即20個細胞／ml，100μl／孔加A、B、C三排為每孔2個細胞。余下2.9ml細胞懸液補加2.9ml含飼養細胞的完全培養液,細胞數為10個／ml，100μl／孔加D、E、F三排，為每孔1個細胞。余下2.2ml細胞懸液補加2.2ml含飼養細胞的完全培養液，細胞數5個／ml，100μl／孔，加G、H兩排，為每孔0.5個細胞。
④ 培養4～5天后，在倒置顯微鏡上可見到小的細胞克隆，補加完全培養液200μl／孔。
⑤ 第8～9天時，肉眼可見細胞克隆，及時進行抗體檢測。
注:初次克隆化的雜交瘤細胞需要在完全培養液中加HT。
2. 軟瓊脂法
① 軟瓊脂的配制
含20％FCS（小牛血清）的2倍濃縮的RPMI1640
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