1. 用 60 mm 或 100 mm 培養瓶,在完全培養基中培養細胞至所希望的密度。
2. 用預熱的低磷酸培養基(無放射性磷酸鹽)沖洗兩次,然后加入含 0.5~1 mCi32P/ml 的低磷酸培養基(50~100 μmol/L 無機磷酸)。
3. 培養結束后,回收 32P 標記培養基,用 10 ml Aquasol (NewEnglandNuclear) 或 Ecolume(ICNBiomedicak) 稀釋,取一等份用液閃計數器測定 32P 活性。測定培養基中磷酸濃度 (Sanui 1974)(可以用無 32P 的低磷酸培養基)。從這兩個數據計算標記培養基 中 32P 比活 。
4. 無二價離子的 PBS 清洗 32P 標記的細胞兩次。每個 100 mm 培養皿加 1 ml 預熱的裂解緩沖液在沸水浴中裂解細胞。用一次性細胞刮刷將細胞裂解物刮到一邊,然后吸到 1.5 ml 離心管,熱水浴 10 分鐘。
5. 冷卻至室溫。由于 DNA 的舒展,裂解物變得很黏稠。
6. 留上清,加 NP40 至 2%,加 MgCl2 至 5 mmol/L ( 都用母液)。加無蛋白酶的 DNA 酶Ⅰ與 RNA 酶各 0.1 mg,室溫放置 20 分鐘。 展開 |