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  • 發布時間:2019-08-13 19:44 原文鏈接: 定量PCR實驗技術分享

    1.  如果擴增曲線ct值比較靠后的話,32左右,一般有什么方法解決?

    ct值比較靠后,對實驗有一定的影響,因為經過那么多次的循環,酶的活性有可能有所下降,這時候擴增效率會有所改變(而定量PCR的理論基礎就是每次循環的擴增效率我們認為是確定的一個值)。因此最好能夠把ct值往前移。

    解決辦法可以將模板加以濃縮或者抽干之后用少量水去溶解。

    2. 為什么合成的引物做不加摸板的對照也能擴增出目的條帶,而內參用同樣體系就沒有呢?

    引物被污染。

    3. 實時定量PCR,熒光定量PCR,實時熒光定量PCR,real-time PCR,這些是不是同一個概念

    是一個概念。

    4. 我的標準曲線的slope總是大于4,而且每個梯度的平行ct值差別比較大,原因?

    這個斜率是=1/LOG 10(擴增效率),理論上擴增效率=2,斜率是3.322。如果斜率大于4,說明擴增效率比較小。可以考查一下反應體系是否合理?酶活是否正常?

    平行管的CT值差別大可以考查一下自己實驗操作是否規范,另外一種原因就是儀器本身的誤差也可能會導致CT值差別比較大。

    當斜率為4的時候,擴增效率是77.8%,斜率大于4的話,效率繼續下降。

    擴增效率的問題實際就是引物的擴增效率,可能酶活的關系沒有那么重要,前提是試劑盒的質量有保證。回到擴增效率,只有在引物和模板處于最適比例時才能得到比較滿意的擴增效率,因此通過調節PCR反應體系中的引物終濃度來解決,可以做一些引物梯度來比較。

    5. ROX染料是什么作用?

    ROX的作用ABI宣稱是用來校準加樣誤差的。

    但是據說ROX的作用實際上是用來校準光程差的。即每個孔的熒光信號經過濾光片在經過聚焦到CCD的時候,走過的光程是不一樣的,這樣在CCD上成像的亮度就不一樣了。所以需要把這個差異用ROX來計算孔間差異有多大,然后差異系數去處理,實際的熒光信號。具體過程我不是非常清楚,請高手指正。

    6. 熒光定量PCR的基線,是怎么確定的呢?

    基線就是背景值,因此就是曲線在沒有“起跳”之前的一段。在軟件上有一個地方可以輸入baseline從第幾到第幾cycle作為基線。設置原則是使沒有起跳之前最多的cycle的信號接近0。


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