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  • 4. 轉基因遺傳分析

    ( 1 ) 低溫處理后,種子(每皿 10~12 粒)在 MS7 ( 25 ml/皿)培養基上萌發 1 周,用于分析轉基因的遺傳特性,如在 R。、R1、R2 代中 bar 基因的遺傳穩定性(見注 11)。

    ( 2 ) 或者在溫室中,利用多孔塑料盤(Griffin   Green  House  and   Nursery  Supplies) 在土中(Metro  Mix 360 Soil) 萌發種子并生長 2 周。用除草劑噴灑生長的植株(見注12)。

    ( 3 ) 1 周后,統計選擇培養基上萌發和未萌發的種子數,或溫室中除草劑處理后存活和死亡的植株數。

    ( 4 ) 采用 X2 檢驗(53 ) 分析轉基因在 R。、R1、R2 代的分離(表 10.2)。

     

    5. 轉基因植株的分子檢測

    (1) 聚合酶鏈反應(PCR)

    ① 轉基因植株中轉基因的檢測(如 bar 和 hav1) : 用葉片遵照 REDExtract- N-Amp  Plant  PCR試劑盒(Sigma- Aldrich, St.   Louis, MO, Cat#  XNA- P ) 的說明書操作提取 DNA。

    ② 使用正向(F ) 和 反向(R ) PCR 引物:例如,bar- F:5'-ATGAGCCCAGAACGACG-3';bar- R:5'-TCA  GATCTCGGTGACGG-3';hva1-R:5' -TGGCCTCCAACCAGAACCAG-3';hva1- R:5'-ACGACTAAAGGA ACGGAAAT-3’。

    ③ 在 PCR 儀(如 Per-kin  Elmer/Applied  Biosystem, Foster  City,  CA) 上進行  DNA 擴增。擴增反應起始用 94°C 變性 4 min,隨后 94°C 1 min、55°C 1 min、72℃ 2 min 進行 35 個循環,最后 72°C 延伸 10 min。

    ④ 在 0.8%  (m/V) 的瓊脂糖凝膠分離并分析 PCR 產物,凝膠用 EB 染色后在紫外燈下觀察。轉基因條帶大小分別是: bar 為 0.59 kb,hva1 為 0.70 kb [ 圖 10.3  ( a ) ]。

     

    (2) Southern  雜交分析

    ① 用基因編碼區(如 hva1 或 bar1 ) 序列作為探針進行 Southern 雜交 [54]。

    ② 用 Phytopure 植物 DNA 提取試劑盒(Amersham-Pharmacia  Biotech) 提取轉基因和非轉基因植株的基因組DNA。

    ③ 用 10 μg R0、R1 和 R2 代植株的基因組 DNA 進行 Southern 雜交分析。

    ④ 用 HindIII 和 HindIII-BamH I 限制酶酶切消化基因組 DNA,然后在 0.8% 的瓊脂糖膠上電泳分離片段。

    ⑤ 將膠變性和中和并印跡到 Hybond-N+ 膜上(Amersham-Pharmacia Biotech) , 依照 Sambrook 等描述的方法[55]。

    ⑥ 用 HindIII-BamH I 酶切 pBY520 質粒,在 0.8% 的低熔點膠上分離帶有 hva1 編碼區的片段。切下 1.0 kb 的片段,用 QIAquick PCR 純化試劑盒純化該片段。

    ⑦ 用 Rad 引物標記試劑盒(GIBC0 BRL) 對純化的基因特異的 DNA 片段進行 [ 32P] -dCTP 放射性標記,方法參照說明書。

    ⑧ 按照標準程序[ 55 ] 用 hav1 基因特異探針與準備好的膜進行雜交。

    ⑨ 隨后,-80°C 條件下用 X 光膠片(Kodak ) 放射自顯影分析雜交膜 [ 圖10.3 ( b )]。

    (3) Northern 雜交分析

    ① 用 TRIZOL (GIBCO BRL) 提取轉基因和非轉基因植株幼葉的總 RNA,方法參照說明書。

    ② 依照 Sambrook 等的方法在 1.2% 的瓊脂糖-甲醛變性膠中電泳分離 10 μg 總 RNA [55]。

    ③ 依照 Sambrook 等的方法將股印跡到 Hybond-N+ 尼龍膜(Amersham-Pharmacia Biotech) 上 [55]。

    ④ 按照標準的 Northern 雜交程序 [55],用 32P 標記的基因特異的探針分析 hva1 的轉錄情況 [ 圖 10.3 ( c ) ]。

    (4) Western 雜交分析

    ① 蛋白質提取、Western 雜交和免疫檢測參照 Xu 等的方法[48]。

    ② 在液氮中研磨約 0.1 g 轉基因和非轉基因植株的新鮮葉片,加入 0.2 ml 蛋白提取緩沖液提取蛋白質。

    ③ 用 Bio-Rad 蛋白分析試劑( Bio-Rad) 按 Bradford 的方法測定每一樣品的總蛋白濃度 [56]。

    ④ 用 12% SDS 聚丙烯酰胺凝膠電泳分離 100 μg 轉基因和非轉基因樣品的可溶性總蛋白。

    ⑤ 電泳結束后,使用半干轉移系統( Bio- Rad ) 將蛋白質電轉到硝酸-纖維素膜上(Amersham-Pharmacia  Biotech) ,方法參照儀器說明。

    ⑥ 將 Western 膜分別和轉基因特異蛋白(如 HVA1 ) 免疫產生的一抗( 如兔抗血清)及二抗(帶有堿性磷酸酶的兔 IgG 的抗體,Sigma- Aldrich) 孵育。

    ⑦ 在堿性磷酸酶的緩沖液中進行膜顯色 [ 圖10.3  ( d ) ]。


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