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  • 發布時間:2020-09-08 08:54 原文鏈接: 蛋白質含量的定量測定——雙縮脲法(Biuret法)

    實驗原理

    具有兩個或兩個以上肽鍵的化合物皆有雙縮脲反應。在堿性溶液中雙縮脲與銅離子結合形成復雜的紫好色復合物。而蛋白質及多肽的肽鍵與雙縮脲的結構類似,也能與Cu2+形成紫紅色絡合物,其最大光吸收在540nm處。其顏色深淺與蛋白質濃度成正比,而與蛋白質的分子量及氨基酸的組成無關,該法測定蛋白質的濃度范圍適于1~10mg /mL。雙縮脲法常用于蛋白質的快速測定。
    紫紅色銅雙縮脲復合物分子結構為:
    試劑和器材
    一、試劑

    雙縮脲試劑:取1.5g硫酸銅(CuSO4?5H2O)和6.0g的酒石酸鉀鈉(NaKC4H4O6 · 4H2O)溶于500mL蒸餾水中,在攪拌下加入300mL 10%NaOH溶液,用水稀釋至1000mL。此試劑可長期保存、備用。

    二、標準和待測蛋白質溶液
    標準蛋白溶液

    10mg/mL結晶牛血清白蛋白溶液或相同濃度的酪蛋白溶液(用0.05mol/L氫氧化鈉溶液配制)。作為標準用的蛋白質要預先用微量克氏定氮法測定蛋白質含量,根據其純度稱量,配制成標準溶液。
    待測蛋白質溶液

    人血清(稀釋10倍)。測試其他蛋白質樣品應稀釋適當倍數,使其濃度在標準曲線測試范圍內。

    三、器材
    試管1.5×15cm(×16),試管架,移液管1mL(×3);5mL(×1);恒溫水浴;分光光度計。
    操作方法

    一、制作標準曲線

    取12支試管分成兩組,按下表平行操作:

    蒸餾


    0

    1

    2

    3

    4

    5

    標準蛋白液(mL)

    0

    0.2

    0.4

    0.6

    0.8

    1.0

    蛋白濃度(mg/mL)

    0

    2.0

    4.0

    6.0

    8.0

    10.0

    水(mL)

    1.0

    0.8

    0.6

    0.4

    0.2

    0.0

    雙縮脲試劑(mL)

    4.0

    4.0

    4.0

    4.0

    4.0

    4.0

    充分混勻后,室溫下(20—25℃)放置30min







    A540







     

    取兩組測定的A540值的平均值,即A540為縱坐標,蛋白質濃度為橫坐標,繪制標準曲線。

    二、樣品測定

    取4支試管分成兩組,按下表平行操作:

     


    0

    1

    血清稀釋液 (mL)

    0

    0.5

    蒸餾水 (mL)

    1.0

    0.5

    雙縮脲試劑 (mL)

    4.0

    4.0

    充分混勻后,室溫下(20—25℃)放置30min



    A540



     

    三、計算

    取兩組測定的平均值計算:

    血清樣品蛋白質含量(mg/100mL)=

     

    其中,Y為標準曲線查得蛋白質得濃度(mg/mL),N為稀釋倍數,V為血清樣品所取的體積(mL),c為樣品原濃度(mg/mL)。

    注意事項

    (1)須于顯色后30min內比色測定。各管由顯色到比色的時間應盡可能一致。

    (3)有大量脂肪性物質同時存在時,會產生渾濁的反應混合物,這時可用乙醇或石油醚使溶液澄清后離心,取上清液再測定。


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