【測定原理】
基本原理同葡萄糖‐6‐磷酸脫氫酶熒光斑點試驗，不同的是用紫外分光光度法定量測定酶活性。即每隔1分鐘在340nm
波長測定孵育液中NADPH 吸光度（共測6次），求出每分鐘吸光度增加的平均值，根據單位時間內NADPH 生成的量來計算G6PD
活性。葡萄糖‐6‐磷酸脫氫酶活性定量測定由于所用試劑及體系的不同，方法有多種：①WHO 推薦的Zinkham 法；②I CSH 推薦的Glock
與McLoan 法；③NBT 定量法；④Chap man 和Dern﹒法等。臨床常用前三種方法。
【標本要求】
用EDTA（每管含20μl 1.0mg／ml EDT A）或肝素（含0.02ml 的1g／L 肝素烘干的試管）抗凝血2ml 均可。若在4℃保存，可以穩定一周，但最好是在48 小時內測定完畢。
【結果報告】
單位定義：根據每升血液每分鐘催化反應1μmol 的NADPH 為1 個國際單位（I U），換算成每克血紅蛋白的G6PD 酶活性。
【參考范圍】
正常人G6PD
活性為：① WHO 推薦的Zinkham 法：（12.01 ±2.09）I U／gHb（37℃）；②I CSH 推薦的Glock
與McLoan 法：（8.34 ±1.59）I U／g Hb（37℃）；③NBT 定量法：（13.1～30.0）NBT 單位；④Chap man
和Dern﹒法：（2.8～7.31）I U／g Hb（25℃）。
【臨床意義】
G6PD 活性下降見于G6PD 缺陷癥患者。一般來說，患者測定值較正常平均值降低40%以上即可做出診斷。
【方法學評價】
本方法能準確地測定患者G6PD
活性，是一種確診試驗，在臨床上也較容易開展，所以臨床上該試驗是確診G6PD 缺陷癥的最主要實驗室測定手段。若在急性溶血期，如果G6PD
活性測定結果正常而又高度懷疑為G6PD 缺陷癥，應采取下列措施用以確定是否存在G6PD 活性下降：①急性溶血后2～3 個月復查G6PD
酶活性；②低滲處理紅細胞，測定處理后溶血的G6PD 活性；③將全血高速離心沉淀后，取底層紅細胞測定其G6PD 活性。如果G6PD
活性明顯降低，則診斷為G6PD 缺陷癥。如果在溶血發作期輸注了紅細胞，會使G6PD
活性的水平升高；新生兒或高網織紅細胞的標本，也會高些，所以要考慮到各方面因素對活性的影響。由于影響因素較多，所以最好同時作陰性對照和陽性對照。
參考文獻：
1 王霄霞 俞 康．血液系統疾病的檢驗診斷．第1版．北京．人民衛生出版社，2007年01月