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  • 發布時間:2022-03-02 12:57 原文鏈接: 細胞平板克隆形成實驗培養基要加雙抗嗎

    可以不加,有時候加了會有拮抗作用。1)24孔板內以5~8x104cells/孔的密度鋪板,鋪足夠量的孔以進行后續的梯度實驗。細胞孵育過夜;(2)準備篩選培養基-含不同濃度嘌呤霉素的新鮮培養基(如0-15μg/mL,至少5個梯度);(3)細胞孵育過夜后加入篩選培養基,孵育細胞;(4)約2-3天更換新鮮的篩選培養基;(5)每日監測細胞觀察存活細胞比例。嘌呤霉素的最佳作用時間一般在1-4天之間。(6)最小的抗生素使用濃度就是指從抗生素篩選開始1-4天內殺死所用細胞的最低篩選濃度。嘌呤霉素篩選穩定轉染細胞(1)day0:24孔板內以5~8x104cells/孔的密度鋪板,孵育過夜;(2)制備篩選培養基:含有最佳篩選濃度嘌呤霉素(由殺滅曲線確定)的新鮮培養基;(3)day1:篩選第一天,去除舊的培養基,加入一定量MOI的病毒顆粒;(加入無血清培養基的總量必須充分覆蓋住細胞。)(4)病毒轉導后約6-8h,再添加1ml完全培養基(血清和雙抗,如果已經使用雙抗。)到細胞內,然后孵育過夜;(5)病毒轉導后48h,使用嘌呤霉素篩選培養基替換舊的完全培養基。孵育。(6)約每2-3天替換新鮮配制的篩選培養基;(7)每天檢測細胞并觀察活細胞生長比例,以及turboGFP表達的水平及所占比例。在某一個時間點幾乎所用存活細胞都可以表達TurboGFP。嘌呤霉素最佳的作用時間在3-10天之間。注:病毒的MOI越高,每個細胞含有的shRNA拷貝和嘌呤霉素耐性基因越多。在做嘌呤霉素篩選時,需記住越高MOI,含越多pac拷貝的細胞能耐受更高的嘌呤霉素濃度。調整嘌呤霉素的濃度去篩選預定量的轉導細胞,但是嘌呤霉素的量不能低于殺死曲線建立的最低濃度

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