通過凝膠電泳分離蛋白后,蛋白質被轉移到固體膜載體上進行后續步驟。有效的轉印依賴于膜的選擇、所使用的轉印設備的類型以及轉印緩沖液的組成。
轉印條件
蛋白的有效轉印依賴于蛋白質從凝膠中遷移出來,也依賴于蛋白在膜上的滯留。像凝膠電泳一樣,轉印步驟將帶負電荷的蛋白轉印到帶正電荷的電極上。轉印效率受所用轉印設備的類型、蛋白類型、轉印緩沖液和轉印條件的影響。
濕轉和半干轉
Western blotting常用兩種傳輸設置:濕轉(圖1.3和表1.4)和半干轉(圖1.4和表1.5)。
濕轉-在濕轉裝置中,一個“三明治結構”被組裝起來,由凝膠和膜組成,膜的兩側放幾層濾紙。濾紙-凝膠-膜-濾紙夾芯的,每一面都有海綿狀的纖維墊,組裝完成后,將其放入充滿轉印緩沖液的轉印槽中,電流通過緩沖液將蛋白從凝膠轉印到凝膠中。
通過改變緩沖系統(見下一節)、轉印時間和轉印電壓,可以優化蛋白從凝膠到膜的轉印。
濕轉方法用于大多數印跡應用,并提供高度一致的結果。該方法特別適用于轉印分子量范圍廣的蛋白,由于其一致性,定量分析時推薦濕轉。
濕轉的缺點之一是每次轉印需要大量的緩沖液。另一個缺點是熱量的產生,特別是在較長的轉印過程中。過多的熱量會導致凝膠間不一致的轉移,蛋白變性,甚至凝膠的破壞。因此,強烈建議使用冰袋、冷卻循環器,保持轉印設備的冷卻。
半干法轉印-半干法轉印裝置使用與濕法轉印類似的堆疊,但是“三明治”結構放置在兩個電極板之間,而不是浸入充滿緩沖液的裝置中(圖1.4)。因此,該方法避免了濕轉系統所需的大量緩沖液(表1.5)。
半干式轉印裝置的最大優點是轉印速度快。由于電極之間的距離被減到最小,產生了一個強電場,從而可快速轉印。該方法的另一個優點是,凝膠兩邊使用不同的緩沖液——一邊促進蛋白從凝膠轉移到膜上,另一邊促進蛋白在膜上停留。
然而,強電場也是這種方法的一個缺點。低分子量的蛋白可能會轉過,此外較大分子量蛋白所需的轉印時間較長,但是緩沖液的量有限。
轉印緩沖液
轉印緩沖液含有多種促進蛋白轉印的成分(表1.6)。緩沖液的優化是基于所使用的轉印系統類型(濕轉或半干轉)、使用的凝膠類型、膜的選擇和感興趣的蛋白。
緩沖液特性——轉印緩沖液必須具有強大的緩沖能力,以在轉印過程中保持傳導率和pH值的穩定。緩沖液的pH值必須與相關蛋白的等電點(pI)不同,否則蛋白不會發生轉移。
最常見的緩沖液是pH值為8.1-8.5的Tris,高于大多數蛋白的pI。當轉印高分子量或堿性蛋白時,也可以使用較高的pH緩沖液,如CAPS或碳酸鹽。
電壓和時間
每次轉印應優化時間和電壓。雖然蛋白在高電壓下轉移更快,但轉移效率并不總是一致的。不足的電流或時間可能導致不完全轉印,而高電流或較長的轉移時間可能導致蛋白透過膜。轉移條件指南通常與轉移設備一起提供。然而,這些條件可以根據感興趣的蛋白進行調整。一般來說,較長的轉印時間和較低的電流,用于濕轉,而較短的轉印時間與高電流用于半干轉。
我們將給5點建議,幫助膠上大分子量蛋白的轉印。
01
犧牲膠的韌性來提高效率
低濃度的丙烯酰胺凝膠可能難以操作。一旦手指觸摸它就會撕裂? 但是,與高濃度的凝膠相比,大蛋白將更有效地從較低濃度的凝膠中移出(分辨率更好)。因此,提高你的靈活性和耐心,嘗試6-7.5%的凝膠。 或者可以嘗試使用梯度凝膠,可以同時分辨小分子量和大分子量蛋白質。
02
去除去垢劑
較大的蛋白質可能在凝膠中沉淀,抑制轉印。 在SDS-PAGE期間添加的SDS通常會解決這個問題,但較大的蛋白質可能需要更多的SDS。 您可以在轉印緩沖液中添加最多0.1%的SDS以阻止沉淀的產生。因為SDS抑制蛋白質與膜的結合,因此請嘗試從低濃度的SDS開始(例如0.0375%),然后逐步提高。
如果確實在轉印緩沖液中添加了SDS,則需要重新優化其他轉印條件,如轉印時間和電流,以防止蛋白透過膜。
03
降低甲醇濃度
甲醇與SDS具有相反的作用。 雖然甲醇增加蛋白與膜的結合,但它從蛋白質中剝離SDS。 因此,降低轉印緩沖液中的甲醇濃度也有助于防止蛋白沉淀。 您可以將濃度降低到10%或更低。 如果您使用的是PVDF膜,則可以完全省去甲醇。 在使用之前,不要忘記用甲醇將膜激活!
甲醇也會導致凝膠收縮,所以如果減少甲醇,你的凝膠會膨脹得更多。 這也有助于轉移大分子量蛋白。 但您可能需要使用比正常情況稍大的濾紙和膜。
04
慢速轉印大分子量蛋白
大分子量蛋白想要獲得良好的轉移效率可能需要更多時間。 快速移動那些大分子可能很困難。 嘗試以較低的電壓過夜轉印。 只是不要忘記保持轉印要在低溫環境!
05
使用濕轉
雖然半干轉印可能更適合設置并且需要較少的緩沖液,但它確實有其缺點。 半干轉印通常比濕轉移效率低,并且不能增加轉印時間以適應更大的蛋白。 轉移大蛋白時最好堅持使用濕轉。
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