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    雙酶切連接反應之全攻略

    前一陣子一直在做雙酶切質粒重組,失敗了 很多次,不過很快改善了 實驗方法,用2周重組了 14個質粒。現就自己的體會,結合丁香園戰友的寶貴經驗,談一下質粒重組的一些個人經驗。1、回收PCR產物:在進行PCR擴增時候,給引物兩端設計好酶切位點,一般說來,限制酶的 選擇非常重要,盡量選擇粘端酶切和 那些酶切效率高的限制酶,如BamHI,HindIII,提前看好各公司的雙切酶所用公用的BUFFER,以及各酶在公用BUFFER里的效率。選好酶切位點后,在各個酶的兩邊加上保護堿基,其原則可參照:http://img.dxy.cn/upload/2006/08/13/31219184.pdf。雙酶切時間及其體系:需要強調的是很多人建議酶切過夜,其實完全沒有必要,我一般酶切3個小時,其實1個小時已經足夠。應用大體系,如100微升。純化問題:純化PCR產物割膠還是柱式,我推薦柱式,因為割膠手法不準,很容易割下大塊的膠,影響純化效率。現在的柱式純化......閱讀全文

    雙酶切連接反應之全攻略

    前一陣子一直在做雙酶切質粒重組,失敗了 很多次,不過很快改善了 實驗方法,用2周重組了 14個質粒。現就自己的體會,結合丁香園戰友的寶貴經驗,談一下質粒重組的一些個人經驗。1、回收PCR產物:在進行PCR擴增時候,給引物兩端設計好酶切位點,一般說來,限制酶的 選擇非常重要,盡量選擇粘端酶切和 那些酶

    雙酶切連接反應之全攻略

    在進行PCR擴增時候,給引物兩端設計好酶切位點,一般說來,限制酶的 選擇非常重要,盡量選擇粘端酶切和 那些酶切效率高的限制酶,如BamHI、HindIII,提前看好各公司的雙切酶所用公用的BUFFER,以及各酶在公用BUFFER里的效率。選好酶切位點后,在各個酶的兩邊加上保護堿基,其原則可

    雙酶切連接反應全攻略和個人經驗總結

    前一陣子一直在做雙酶切質粒重組,失敗了很多次,不過很快改善了 實驗方法,用2周重組了14個質粒。現就自己的體會,結合前人的寶貴經驗,談一下質粒重組的一些個人經驗。1、回收PCR產物:在進行PCR擴增時候,給引物兩端設計好酶切位點,一般說來,限制酶的選擇非常重要,盡量選擇粘端酶切和那些酶切效率高的限制

    雙酶切反應

    雙酶切buffer的選擇: 1、U :Supplied with its own unique reaction buffer that is different from the four standard NEBuffers. Its compatibility with the fou

    【共享】雙酶切

    1、 在雙酶切載體時如果2個酶切位點靠得很近,必須注意酶切順序。因為有的限制性內切酶要求其識別序列的兩端至少保留有若干個堿基才能保證酶的有效切割。有的酶要求識別序列兩端有多個堿基的,則必須先切,否則就可能造成酶切失敗。2、 回收PCR產物:回收的PCR產物片段=1:10 ,一般取前者0.03pmol

    雙酶切反應酶活性分析及雙酶切建議緩沖液

    同步雙酶切是一種省時省力的常用方法。選擇能讓兩種酶同時作用的最佳緩沖液是非常重要的一步。NEB每一種酶都隨酶提供相應的最佳 NEBuffer,以保證100%的酶活性。NEBuffer的組成及內切酶在不同緩沖液中的活性見《內切酶在不同緩沖液里的活性表》及每支酶的說明書。能在最大程度上保證兩種酶活性

    雙酶切小技巧

    A.任何時候2 種酶的總量不能超過反應體系的1/10體積。B.雙酶切時如果兩種酶反應溫度一致而buffer不同時,可查閱內切酶供應商在目錄后的附錄中提供的各種酶在不同buffer中的活力表(也可以向ebiotrade.com客戶服務部索取),如果有一種buffer能同時使2 種酶的活力都超過70

    雙酶切反應酶活性分析

    同步雙酶切是一種省時省力的常用方法。選擇能讓兩種酶同時作用的最佳緩沖液是非常重要的一步。NEB每一種酶都隨酶提供相應的最佳NEBuffer,以保證100%的酶活性。NEBuffer的組成及內切酶在不同緩沖液中的活性見《內切酶在不同緩沖液里的活性表》及每支酶的說明書。能在最大程度上保證兩種酶活性的緩沖

    質粒DNA的雙酶切

    實驗概要掌握質粒DNA雙酶切的原理和操作方法。實驗原理分子生物學實驗中,基因的重組與分離涉及到一系列的酶促反應。許多種酶在基因克隆實驗中有著廣泛的用途。限制性內切酶是一類能識別雙鏈DNA分子特異性核酸序列的DNA水解酶。多種細菌能合成限制性核酸酶,這是它們保護自己,降解外來DNA分子的重要手段。每一

    重組質粒雙酶切鑒定

      既然你的質粒已經提出來了,那么感受態、轉化等因素就不必再考慮了。  你看看雙酶切后載體的位置有幾條帶,如果是兩條,那說明酶切不完全,如果是一條,那說明酶切效率沒問題。  pET28a分子量為5.6k,你的插入片段為500bp,如果你的質粒完全切開,載體和插入片段的摩爾比為1:1,質量比就是5.6

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