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1．原理 用Iodogen為氧化劑，對蛋白質和多肽抗原進行碘化標記，把125I直接引進分子中的酪氨酸殘基上。標記過程中被標記樣品不與Iodogen混合，標記后取出樣品即停止反應，不使用任何還原劑。 2．方法 （1）標記之前，先把Iodogen溶于有機溶劑，涂于管底，并使之干燥。 （2）標記時，將蛋白質溶液10～20μg/10μl(0.5mol/L,pH7.5PB)置于反應管中，反應管置于冰浴中。碘化時，125I與蛋白質克分子之比例為1～1.2。反應時間在溫和的連續的攪拌下可達10min，從反應管中轉移出反應混合液，使其反應停止。反應液轉移到含有200μl0.01mol/L、pH7.2PB和0.15mol/L NaCl溶液中，層析分離前再放置5min，使其未標記的碘離子還原成分子碘，以避免在帶有緩沖液的柱中使白蛋白碘化。 3．注意事項 （1）涂有Iodogen的反應管，有氮氣中密封，并貯存在-20℃條件下，至少......閱讀全文
在RIA中，標記抗原質量的優劣，直接影響測定結果，必須制備比放射性強、純度高的標記抗原，并保持免疫活性不受喪失。 一、同位素的選擇 同位素有穩定性和放射性兩種。放射性同位素可利用其衰變時放出的放射線進行測量，這種測量較靈敏而方便，故多用放射性同位素。標記抗原，常用的放射性同位素有3H、14C、1
（二）乳過氧化物酶法（LPO） 本法反應溫和，對抗原、抗體免疫活性影響小，已被廣泛應用。缺點是標記率較低，一般為20～40%。 1．原理此法是利用乳過氧化物酶（Lactoperoxidase）有促進微量過氧化氫對125I-的氧化作用，生成125I+，并標記在多肽、蛋白質酪氨酸分子上。 2．方法