掃描電鏡——細胞內部結構冷凍割斷法
該方法簡便，結構清晰，已得到廣泛應用。其操作方法如下：1) 取材和固定：為了使細胞結構清晰，不被過多的血細胞污染，可在取材前用灌注法沖洗。即先將動物麻醉，經腹主動脈注入生理鹽水或低分子量的右,切開下腔靜脈放血，至無血色為止。然后迅速取材，將樣品修成1mm×1mm×5mm大小，投入1%鋨酸溶液中固定1小時，用1/15M磷酸緩沖液(pH7.4)清洗兩次，每次10分鐘。2) 二甲基亞砜浸泡：將樣品依次放入25%、50%二甲基亞砜溶液中，各浸泡30分鐘。3) 割斷：用TF—1型冷凍割斷裝置進行割斷。然后將割斷后的樣品放到50%二甲基亞砜中，等融化后再用1/15M磷酸緩沖液浸洗，每次10分鐘，換液5次。4) 軟化及后固定：將樣品放入0.1%鋨酸中軟化，溫度20℃，時間48～72小時。然后用1%鋨酸固定1小時，雙蒸水浸洗1小時，換液幾次，需徹底清洗干凈。5) 導電染色：將樣品放入2%丹寧酸中2小時(或過夜)，以雙蒸水清洗1小時，換液......閱讀全文
關于氯鋨酸銨的操作處置與儲運介紹
操作注意事項：嚴加密閉，提供充分的局部排風和全面通風。盡可能采取隔離操作。操作人員必須經過專門培訓，嚴格遵守操作規程。建議操作人員佩戴防塵面具（全面罩），穿膠布防毒衣，戴橡膠手套。避免產生粉塵。避免與酸類、堿類接觸。搬運時要輕裝輕卸，防止包裝及容器損壞。配備泄漏應急處理設備。倒空的容器可能殘留有
掃描電鏡樣品制備程序
掃描電鏡樣品制備程序? ? 一、固定：戊二醛-鋨酸雙固定法?? 1．2.5%戊二醛（試劑1）固定4小時（或者過夜）? 2．0.1M?磷酸緩沖液（試劑2）清洗3次，每次15-30分鐘?3．1%鋨酸（試劑3）固定2-4小時? 4．0.1M?磷酸緩沖液（試劑2）清洗3次，每次15分鐘? 二、脫水：乙醇系列
掃描電鏡樣品制備程序
掃描電鏡樣品制備程序? ? 一、固定：戊二醛-鋨酸雙固定法?? 1．2.5%戊二醛（試劑1）固定4小時（或者過夜）? 2．0.1M?磷酸緩沖液（試劑2）清洗3次，每次15-30分鐘?3．1%鋨酸（試劑3）固定2-4小時? 4．0.1M?磷酸緩沖液（試劑2）清洗3次，每次15分鐘? 二、脫水：乙醇系列
微生物擬核體內體外染色觀察實驗_富爾根氏染色法
實驗方法原理富爾根氏（Feulgen）染色法是根據席夫氏（Schiff）試劑進行的反應而建立的微生物擬核染色法。席夫氏試劑含有堿性復紅和亞硫酸，堿性復紅與亞硫酸結合后，失去醌式結構而變為無色。當 DNA 經酸作用而生成的醛化合物與席夫氏試劑結合后，使醌式結構恢復，合成一種帶紫紅色的堿性復紅衍生物。此
微生物擬核體內體外染色觀察實驗
實驗方法原理 富爾根氏（Feulgen）染色法是根據席夫氏（Schiff）試劑進行的反應而建立的微生物擬核染色法。席夫氏試劑含有堿性復紅和亞硫酸，堿性復紅與亞硫酸結合后，失去醌式結構而變為無色。當 DNA 經酸作用而生成的醛化合物與席夫氏試劑結合后，使醌式結構恢復，合成一種帶紫紅色的堿性復紅衍生
自由基顯示實驗
實驗方法原理 實驗材料 組織樣品試劑、試劑盒 鈰生理溶液生理溶液多聚甲醛鋨酸實驗步驟 1. 組織取下后，立即在含 1 mmol/L 鈰生理溶液中切成小塊，孵育 5 min。2. 生理溶液漂洗 5 min。3. 4％ 多聚甲醛固定、漂洗。4. 鋨酸后固定、脫水、包埋等同常規。5. 電鏡觀察。
電子顯微鏡檢測細胞方法
、儀器與試劑射電子顯微鏡或掃描電子顯微鏡，組織切片機，離心機，離心涂片機。戊二醛固定液：取25%戊二醛原液10ml，加入0.2mol/L PBS液50ml，再加入蒸餾水40ml，混勻，4℃保存。鋨酸固定液：將含有1g鋨酸的小瓶浸入清潔液一晚，用雙蒸水沖洗數遍后，將小瓶放在盛有50ml雙蒸水的100m
非凝固型固定劑的種類介紹
1、?福爾馬林(formalin)濃度在2～10%的福爾馬林，為很好的硬化劑，但是滲透力薄弱，而且對材料會引起強烈收縮。所以最好與其他藥劑混合使用，效果會大大增加。注意的是，它亦是一種還原劑，故不宜與氧化劑鉻酸、鋨酸相混。特點：很好的硬化劑，強還原劑；滲透力弱。2、重鉻酸鉀(potassium di
自由基顯示實驗
H2O2細胞化學法 細胞化學法 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 實驗材料 組織樣品
電子顯微鏡檢測法檢測細胞凋亡
具有凋亡特征的細胞程序性死亡后，可在掃描或透射電鏡下觀察到“凋亡小體”，該小體系由細胞膜卷曲、脫落形成的小泡，其內包含有完整的細胞器及核片段。這種小體易被巨噬細胞、上皮細胞等吞噬，借以清除正常發育過程中死亡的細胞。細胞壞死則無此小體形成。但是并非所有發生程序性死亡的細胞皆形成凋亡小體。 一、儀器與