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1．IEF之后，用去離子水充分地清洗管子。2．加熱500ml 0.6％ Deconex溶液至60～80℃。3．將玻璃管子浸入Deconex溶液，70℃下放置3次10分鐘：每10分鐘之后，分別用鑷子移走玻璃管，倒出清洗液，加入新的清洗液，再于70℃下清洗10分鐘。4．用去離子水浸洗管子。5．加熱500ml 0.1mol/L鹽酸至95℃。6．將管子放到一個玻璃燒杯中，加0.1mol/L鹽酸，直到將燒杯加滿并覆蓋管子。將管子在鹽酸溶液中95℃放置30分鐘。7．用去離子水清洗管子，然后干燥。......閱讀全文
雙向電泳IEF （sigma）IEF（not IPG）/SDS-PAGE最簡單的裝備推薦如下,適合于沒多少money做IPG又想做“熱”的所謂蛋白質組的. IEF用Biorad的圓盤電泳槽（不行用國產的吧,不推薦）,SDS-PAGE用六
試劑、試劑盒尿素裂解溶液 &nbs
試劑、試劑盒尿素裂解溶液IPG 干膠條水化液IPG 膠條平衡液SDS 凝膠緩沖液電極緩沖液儲液丙烯酰胺 甲叉雙丙烯酰胺溶液過硫酸銨溶液瓊脂糖溶液儀器、耗材等電聚焦儀IPGphor多重垂直 SDS 電泳儀實驗步驟3.1 第一向：在 IPG 膠條中進行等電聚焦（ IPG-IEF)采用 IPG ( IPG
實驗概要蛋白質組研究的發展以雙向電泳技術作為核心. 雙向電泳由O’Farrell’s于1975年首次建立并成功地分離約1000個E.coli蛋白，并表明蛋白質譜不是穩定的，而是隨環境而變化. 雙向電泳原理簡明，第一向進行等電聚焦，蛋白質沿pH梯度分離，至各自的等電點；隨后，再
實驗方法原理差異去垢劑分離法（differential detergent fractionation, DDF) 包括使用一系列含不同去垢劑的 PIPES 緩沖液對細胞進行連續抽提，首先是毛地黃皂苷，其次是 Triton, 最后是 Tween/脫氧膽酸鹽。這些步驟產生 4 種在生化和電泳上相異的組
實驗方法原理 剪接體是由 RNA 和蛋白質構成的核糖核蛋白體（RNP)，它在前體 mRNA 的剪接過程中可去除前體 mRNA 的內含子。snRNP 是由 snRNA 及其結合蛋白組成
剪接體是由 RNA 和蛋白質構成的核糖核蛋白體（RNP)，它在前體 mRNA 的剪接過程中可去除前體 mRNA 的內含子。snRNP 是由 snRNA 及其結合蛋白組成，在前體 mRNA 的剪接過程起著重要作用。本實驗來源「RNA 實驗指導手冊」主編：鄭曉飛。實驗方法原理剪接體是由 RNA 和蛋白質
基本方案 附加方案：去垢劑提取物中RNA的分離 附加方案：用鎂沉淀微管蛋白和微管結合蛋白 實驗方法原理
實驗方法原理差異去垢劑分離法（differentialdetergentfract10nat10n,DDF)包括使用一系列含不同去垢劑的PIPES緩沖液對細胞進行連續抽提，首先是毛地黃皂苷，其次是Triton,最后是Tween/脫氧膽酸鹽。這些步驟產生4種在生化和電泳上相異的組分(見圖3.3和表3.
實驗材料：ESI-MS
實驗材料ESI-MSMALDI - MS試劑、試劑盒提取緩沖液儀器、耗材SDS- 聚丙烯酰胺凝膠電泳實驗步驟眾所周知，在實驗室內和實驗室間難以保證雙向聚丙烯酰胺凝膠電泳的重復性。在我們實驗室，強制性地要求嚴格遵守標準操作程序（sop ) , 以確保不同的操作者可以獲得可重復的分離結果。小麥白面粉樣品
實驗材料ESI-MSMALDI - MS試劑、試劑盒提取緩沖液儀器、耗材SDS- 聚丙烯酰胺凝膠電泳實驗步驟眾所周知，在實驗室內和實驗室間難以保證雙向聚丙烯酰胺凝膠電泳的重復性。在我們實驗室，強制性地要求嚴格遵守標準操作程序（sop ) , 以確保不同的操作者可以獲得可重復的分離結果。小麥白面粉樣品