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·在使用前將DETACHaBEAD?溶液徹底混勻。·獲得良好得率最為關鍵的參數是在孵育過程中DETACHaBEAD?溶液與樣品的混勻效果。我們推薦用戶采用能夠持續維持管體運動狀態、并讓樣品保持在管底以避免磁珠變干的混合器或旋轉儀（如HulaMixer?樣品混合器（目錄編號15920D））。·減少細胞分離過程中的孵育時間（較低的親和力會提升釋放效率）。·在與DETACHaBEAD?產品孵育后、放到磁力架吸附操作前，對磁珠結合的細胞上下吹打至少10次，以盡可能多的使磁珠從細胞上脫落。過于劇烈的吹打會降低細胞的活力。·在操作過程中避免不必要的延遲。......閱讀全文
·在使用前將DETACHaBEAD?溶液徹底混勻。 ·獲得良好得率最為關鍵的參數是在孵育過程中DETACHaBEAD?溶液與樣品的混勻效果。我們推薦用戶采用能夠持續維持管體運動狀態、并讓樣品保持在管底以避免磁珠變干的混合器或旋轉儀（如HulaMixer?樣品混合器（目錄編號15920D））。
·樣本制備：所有的分離操作都必須在單細胞懸液中進行。 ·請確保使用了正確的細胞數量，稀釋倍數和抗體混合物體積，Dynabeads?磁珠和緩沖液系統。 ·在混勻步驟使用HulaMixer?樣品混合器（目錄編號15920D）以確保分離操作中的混合效果良好。 ·在接觸磁力架前的最后操作步驟中，用戶
·在CELLection? Dynabeads? 磁珠的包被過程中，對靶標抗體的數量進行滴定/優化。 ·如果目的細胞的數量很低，或細胞表面的靶標抗原濃度很低，則推薦使用間接法技術。 ·使用>1 x 10E7個磁珠/mL樣品（>25 μL）。 ·在使用前對全血樣本進行洗滌。 ·為了確保獲得最
使用 Invitrogen Dynabeads?Flowcomp?細胞分離試劑盒的過程中提升細胞釋放效率的技巧 ·由于DSB-X 生物素-鏈霉親和素之間的結合隨著時間延長而逐漸變強；因此不要將釋放步驟的時間延長至實驗方案中規定的時間以上。在某些案例中，更短的孵育時間會獲得更高的得率。 ·
·請確保RPMI+1% FBS的pH值不要太高：DNA酶I在pH 7.0–7.4之間的效率最高（RPMI暴露于大氣環境中會導致pH值增加，pH指示劑會變紫）。 ·請勿在DNA酶I的處理過程中使用RPMI+10% FCS。應用10%的FBS會比1%的FBS獲得的細胞得率更低（可能由于一些批次的FB
1.與破壞性檢測相配合無損檢測的較大特點是能在不損傷材料、工件和結構的前提下進行檢測，所以無損檢測后，產品的檢查率可以達到很高的。在這里我們例舉一下常常使用無損檢測方法的儀器有涂層測厚儀、超聲波測厚儀，這兩種儀器通常都是使用無損檢測方法來涂層厚度或管道厚度檢測工作的，但是，并不是所有需要測試的項目和
產品粉粒太細，跑粉現象嚴重，產品得率低 產品顆粒太細會影響其溶解性、沖調性能。原因是含固量太低或進料量太小。補救措施是提高料液的含固量，加大進料量，提高進風溫度。跑粉損失過多，大大影響成品的得率，一般的原因是旋風分離器的分離效果差。若出現這種情況，應檢查旋風分離器是否由于敲擊、碰撞而變形
干細胞選擇指示劑時，一般要求變色明顯（所以一般不選用石蕊），指示劑的變色范圍與恰好中和時的pH要吻合。 ①在酸堿中和滴定的實驗中，不用石蕊作指示劑，主要原因是：石蕊的“紅色→紫色”、“紫色→藍色”的顏色變化不夠明顯，不利于及時、準確地作出酸堿是否恰好完全中和的判斷。 ②強酸強堿相互滴定，生成的
大腸桿菌老化：請涂布平板培養后，重新挑選新菌落進行液體培養。2. 質粒拷貝數低：由于使用低拷貝數載體引起的質粒DNA提取量低，可更換具有相同功能的高拷貝數載體。???????????? 3. 菌體中無質粒：有些質粒本身不能在某些菌種中穩定存在，經多次轉接后有可能造成質粒丟失。例如，柯斯質粒在大腸桿菌
固形物含量對蜂蜜粉得率的影響： 試驗表明，固形物含量在50g/100g時，蜂蜜粉的得率zui高。固形物含量高于或低于50g/100g時，蜂蜜粉得率均減小。因此，確定zui佳固形物含量為50g/100g。 ? 溫度含量對蜂蜜粉得率的影響： 在噴霧干燥微膠囊化的過程中，進風溫度、進料流量對粉末