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細胞傳代(1) 試驗準備：200ul/1mlTip頭各一盒（以上物品均需高壓滅菌），酒精棉球，廢液缸，試管架，微量移液器，記號筆，培養皿，離心管。(2) 棄掉培養皿中的培養基，用1ml的PBS溶液洗滌兩次。(3) 用Tip頭加入1ml Trypsin液，消化1分鐘（37。C，5%CO2 )。用手輕拍
電流能夠可逆地擊穿細胞膜形成瞬時的水通路或膜上小孔促使DNA分子進入胞內，這種方法就是電穿孔。當遇到某些脂質體轉染效率很低或幾乎無法轉入時建議用電穿孔法轉染。一般情況下，高電場強度會殺死50%-70% 的細胞。現在針對細胞死亡開發出了一種電轉保護劑，可以大大的降低細胞的死亡率，同時提高電穿孔轉染效率
陽離子脂質體表面帶正電荷，能與核酸的磷酸根通過靜電作用，將DNA分子包裹入內，形成DNA脂復合物，也能被表面帶負電的細胞膜吸附，再通過融合或細胞內吞進入細胞。脂質體轉染適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養細胞中，是目前實驗室最方便的轉染方法之一，其轉染率較高，優于磷酸鈣法。由于脂質體對細胞有一定的毒性
LIPOFECTAMINE 2000轉染試劑轉染步驟此實驗步驟設計用來進行24孔板貼壁細胞的瞬時或穩定轉染，其為設計用來在生長培養基中直接加入復合物。1. 轉染前一天，胰酶消化細胞并計數，細胞鋪板，使其在轉染日密度為90%。細胞鋪板在0.5ml含血清，不含抗生素的正常生長的培養基中。2. 對于每孔細
FuGENE6（Roche）轉染步驟： 轉染前一天將細胞分至培養板，轉染當天細胞應50-80％融合。將細胞以1-3×105/2 ml接種于6孔板后孵育過夜將達到如此密度。 將FuGENE6 Reagent在室溫孵育10-15分鐘。使用之前將FuGENE6顛倒混勻一下。 1. 在PCR管中加入不含血
DNA轉染·?????????Transfection of Mammalian Cells Using Lipofectamine (LTI)·?????????Guide to Eukaryotic Transfections with Cationic Lipid Reagents?(PDF)
脂質體介導法 磷酸鈣沉淀法 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 外源基因進入細胞主要有四種方法：電擊法、磷酸鈣法和脂質體介導法和病毒介導法。電擊法是在細胞上短時間暫時性的
細胞轉染 對于活細胞實驗，需要實驗設備能夠維持細胞的生長。顯微鏡上需要配備合適的熱臺，可控制一定的?CO2?濃度、合適的濕度和溫度等。此外，是否是倒置顯微鏡??能否使用高倍鏡、油鏡或水鏡觀察細胞??為了便于成像，一般使用底部為玻璃片的細胞培養皿。由于顯微鏡并不是無菌的環境，因此對于一般的活細胞實
摘要： 通過脂質體介導轉染法及電穿孔等基因轉染技術，將靶基因導入細胞，一般在轉染后48小時左右，靶基因即可在細胞內表達。根據不同的實驗目的，48小時后即可進行靶基因表達的檢測等實驗。 原理： 通過 脂質 體介導轉染法及電穿孔等基因轉染技術，將靶基因導入細
? ???一些真核蛋白在原核宿主細胞中的表達不但行之有效而且成本低廉，然而許多在細菌中合成的真核蛋白或因折疊方式不正確，或因折疊效率低下，結果使得蛋白活性低或無活性。不僅如此，真核生物蛋白的活性往往需要翻譯后加工，例如二硫鍵的精確形成、糖基化、磷酸化、寡聚體的形成或者由特異性蛋白酶進行的裂解等等，而