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  • 發布時間:2019-09-13 14:07 原文鏈接: 親和層析實驗

    • 可溶性抗原或膜結合抗原的分離

               

    實驗材料

    蛋白質

    試劑、試劑盒

    Tris TSA 裂解緩沖液 脫氧膽酸鈉 洗滌緩沖液 三乙醇氨緩沖液

    儀器、耗材

    層析柱 離心管 離心機

    實驗步驟

    1.  準備一支活化后被淬滅的Sepharose預柱(5 ml 柱床)和一支Ab-Spharose免疫親和層析柱,并將它們串聯起來。

    2.  以冰冷TSA溶液重懸50 g 細胞至1~5×108細胞/ml,或往收集的細胞或組織勻漿中加入1~5倍體積的TSA。再加入等體積的冰冷裂解緩沖液,于4℃攪拌1 h。

    3.  以4 000 g 離心10 min,除細胞核,輕輕倒出上清,保留之。

     

    4.  對于提純膜抗原,在去細抱核的上清中加入0.2倍體積的5%脫氧膽酸鈉,于水浴或 4℃放置10 min,轉移至quick-seal離心管100 000 g 離心1 h,小心移出上清并保留之。

     

    5.  將預柱連接于免疫親和層析柱。
     

    圖一、免疫親和層析柱


    6.  依次用下列緩沖液洗柱子:
    10倍柱床的洗滌緩沖液
    5倍柱床的Tris緩沖液,pH8.0
    5倍柱床的Tris緩沖液,pH9.0
    5倍柱床的三乙醇氨溶液
    5倍柱床的洗滌緩沖液

    7.  將上清(保留一些樣品待分析用)上樣于預柱,讓它們以5柱床/h 的流速流過預柱和免疫親和層析柱,按加樣上清體積的1/10~1/100分部收集穿透液。
     

    8.  用5倍體積的洗滌緩沖液洗柱子,然后關閉兩根柱子的止水閥。拆離親和柱與預柱的連接,打開親和柱的止水閥,讓柱床上面的液體流至柱床表面。

    9.  依次以下列溶液洗柱子,并分部收集流出組分:
    5倍體積的洗滌緩沖液
    5倍體積的Tris緩沖液,pH8.0
    5倍體積的Tris緩沖液,pH9.0

    10.  以5倍體積的三乙醇胺溶液洗脫,將每一個柱床體積的洗脫液收集于含0.2體積的1 mol/l Tris·Cl 緩沖液,pH6.7的試管中,以中和冼脫液。

     

    11.  以5倍體積的TSA溶液洗柱子。

     

    12.  分析含抗原的洗脫液組分:每份洗脫液取50 μl SDS-PAGE銀染分析。取0.5~ 1 ml 上柱樣品和有代表性的穿透流出液及洗脫液以Ab-Sepharose免疫共沉淀,并接著進行SDS-PAGE和銀染檢測以確定柱子是否已被飽和。

                展開           
    注意事項

    在每次更換緩沖液時,按下述過程洗免疫親和柱:

    1.  關閉止水閥并打開注于上端的帽子。

    2.  用一注射器連接于來自緩沖液貯槽的輸液管的出口處,吸去所有液體。

    3.  將管子移至盛在另一貯槽中的另一種洗柱緩沖液中,用注射器抽吸,使管子充滿液體,取走注射器,調整流速,并用此緩沖液冼柱子的內壁。

    4.  打開止水閥,讓柱子的緩沖液流至往床水平面,放松柱子的上帽讓緩沖液流下到柱床以上幾厘米的水平,收緊帽子,開始洗滌或洗脫。

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