westernblot實驗經驗總結（一）

做了很久的WB（western blot），走了很多彎路，其實發現WB想要做好并不難，總結了WB實驗中可能會遇到的問題，分析了可能的原因及對應的解決方案，希望能成為你實驗成功的基石。

問題1：轉膜不充分

(1)膜沒有完全均勻濕透

使用100% methanol浸透膜。

(2)靶蛋白分子量小于10 000

選擇小孔徑的膜，縮短轉移時間。

(3)靶蛋白等電點等于或接近轉移緩沖液pH值

可嘗試使用其他緩沖液如CAPS緩沖液（pH 10.5)或使用低pH值緩沖液如乙酸緩沖液。

(4)甲醇濃度過高

過高甲醇濃度會導致蛋白質與SDS分離，從而沉淀在凝膠中，同時會使凝膠收縮或變硬，從而抑制高分子量蛋白的轉移。降低甲醇濃度或者使用乙醇或異丙醇代替。

(5)轉移時間不夠

對于厚的膠以及高分子量蛋白需要延長轉移時間。

問題2：背景高

(1)膜沒有完全均勻濕透

使用100% methanol浸透膜。

(2)洗膜不充分

增加洗液體積和洗滌次數。

(3)阻斷不充分

增加封閉液孵育時間，或者提高溫度。選擇合適的封閉試劑（脫脂奶粉，BSA，酪蛋白等）。

(3)二抗濃度過高

降低二抗濃度。

(4)檢測過程中膜干燥

保證充分的反應液，避免出現干膜現象。

(5)曝光過度

縮短曝光時間。

(6)抗體與阻斷蛋白有交叉反應

檢測抗體與阻斷蛋白的交叉反應性，選擇無交叉反應的封閉劑。洗滌液中加入Tween-20可減少交叉反應。

問題3：沒有陽性條帶

（1）抗體染色不充分

增加抗體濃度，延長孵育時間。

（2）酶失活

直接將酶和底物進行混合，如果不顯色則說明酶失活了。選擇在有效期內、有活性的酶聯物。

（3）標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低

設置陽性對照，如果陽性對照有結果，但標本沒有則可能是標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低。可考慮增加標本上樣量解決靶蛋白含量低的原因。

（4）試劑不匹配

一抗與組織種屬，一抗與二抗或/和底物與酶系統之間不匹配。通過設置內參照可以驗證二級檢測系統的有效性。

（5）一抗失效

選擇在有效期內抗體；并選擇現配現用的工作液。

（6）HRP抑制劑

所用溶液和容器中避免含有疊氮化鈉。