來自韓國基礎科學研究所IBS的研究人員發表了題為“Genome-wide target specificities of CRISPR RNA-guided programmable deaminases”的文章,證實了最近研發的基因編輯方法的準確性。這一研究成果公布在4月10日的Nature Biotechnology雜志上。
文章的通訊作者是基因編輯領域的大牛KIM Jin-Soo,其研究組曾在Nature等頂級雜志發表多篇文章,提出了CRISPR技術領域的不少創新想法,比如他們曾設計出了目前最小的CRISPR-Cas9,并通過腺伴隨病毒(AAV)將其遞送到了肌細胞和小鼠的眼睛里,用以編輯導致失明的基因。
對于最新這項研究,Kim表示,“這是第一次在整個基因組水平上驗證了這種堿基編輯的準確性”。
基因編輯工具的快速發展令整個生物學研究領域瘋狂,目前第三代DNA剪刀的主角是CRISPR,這是一種比其前身更快更便宜的工具。CRISPR-Cas9和CRISPR-Cpf1通過切除小的DNA序列,訥訥感沉默或降低錯誤基因的表達。然而,去年一種新的堿基編輯方法:不會引起隨機的DNA缺失和插入,而是替換一個DNA基因,吸引了生物學家的注意。
這種基因校正方法很關鍵,因為一些疾病就是因為DNA的四種基本組分之一(腺嘌呤(A)、胞嘧啶(C)、鳥嘌呤(G)和胸腺嘧啶(T))出錯引起的。DNA中的單核苷酸錯誤被稱為點突變,由點突變引起的疾病包括:囊性纖維化,鐮狀細胞性貧血和色盲。
與現有的第三代DNA剪刀不同,單堿基編輯方法是由與CRISPR-Cas9(nCas9,切口酶)變體與另外一種稱為胞嘧啶脫氨酶(cytosine deaminase)構成,用T代替C,通過導向RNA直接指向正確DNA位置。不過到目前為止,還不知道這種堿基編輯器是僅在錯誤基因區域中發揮作用,還是能在其它區域進行替換(脫靶)。
上個月,IBS的研究人員分別改變了肌營養不良蛋白基因(Dmd),以及酪氨酸酶基因(Tyr)中的單個核苷酸,用以檢驗CRISPR-nCas9胞苷脫氨酶的融合。研究獲得了兩方面的成功:攜帶Dmd基因單個核苷酸突變的小鼠胚胎,導致小鼠肌肉中無法產生dystrophin蛋白;另外一種是攜帶Tyr突變的小鼠,顯示的病癥是白化病性狀。Dystrophin蛋白與肌肉肌營養不良癥疾病相關,酪氨酸酶控制黑素的生成。
而在最新這項研究中,他們又在基因組范圍能驗證了這一方法的準確性,并在肌營養不良蛋白和酪氨酸酶基因中修改了單個核苷酸。
為了確定整個基因組的基因編輯正確性,研究人員修改了一種錯誤檢測技術:Digenome-seq,這一技術可在全基因組范圍內檢測人類細胞中的CRISPR/Cas9脫靶效應(新方法終結CRISPR-CAS9爭論)。同時也改進了計算機程序(Digenome 2.0),更全面地識別脫靶,比較了不同的導向RNA,從而找到了減少故障并增加特異性的RNA。
利用這種技術,研究人員驗證了堿基編輯器技術的正確性,并且發現它比當前第三代CRISPR-Cas9更準確。堿基編輯技術能誘導人類基因組中1-67個位點發生C-to-T轉換,而CRISPR-Cas9在30-241個位點能進行切割,這意味著堿基編輯器正在減少脫靶變化。 “因此,預計這些堿基編輯器將會成為廣泛使用的受歡迎CRISPR技術,”Kim說。
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