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  • 發布時間:2019-11-19 11:36 原文鏈接: 種子發芽率的快速測定

    種子發芽率是指在最適宜條件下,在規定天數內,發芽的種子占供試種子的百分數。它是決定種子品質和實用價值大小的主要依據,與播種時的用種量直接有關。但是常規方法(直接發芽)測定發芽率所需時間較長,特別是有時為了應急需要,沒有足夠的時間來測定發芽率,遇到休眠種子也無法知道。快速測定法則能在較短時間內獲得結果。

    Ⅰ.氯化三苯四氮唑法( TTC法)

    原理

    凡有生命活力的種子胚部,在呼吸作用過程中都有氧化還原反應,而無生命省略的種胚則無此反應。當TTC滲入種胚的活細胞內,并作為氫受體被脫氫輔酶(NADH2 或NADPH2 )上的氫還原時,便由無色的TTC變為紅色的三苯基甲(TTF)。

    儀器藥品

    恒溫箱    燒杯

    培養皿    鑷子

    刀片     天平

    0.5% TTC溶液:稱取0.5g TTC放在燒杯中,加入少許95%乙醇使其溶解,然后用蒸餾水稀釋至100ml。溶液避光保存,若變紅色,即不能再用。

    操作步驟

    1.浸種

    將待測種子在30─35℃溫水中浸種(大麥、小麥、秈谷6─8小時,玉米5小時左右,粳谷2小時),以增強種胚的呼吸強度,使顯色迅速。

    2.顯色

    取吸脹的種子200粒,有刀片沿種子胚的中心線縱切為二半,將其中的一半置于2只培養皿中,每皿100個半粒,加入適量的0.5% TTC,以覆蓋種子為度。然后置于30℃恒溫箱中0.5─1小時。觀察結果,凡胚被染為紅色的是活種子。

    將另一半在沸水中煮5分鐘殺死胚,作同樣染色處理,作為對照觀察。

    3.計算活種子的百分率,如果可能的話與實際發芽率作一比較,看是否相符?

    Ⅱ.溴麝香草酚藍法( BTB法)

    原理

    凡活細胞必有呼吸作用,吸收空氣中的O2 ,放出CO2 。CO2 溶于

    增加,可用溴麝香草酚藍(BTB)來測定酸度的改變。BTB的變色范圍為pH6.0─7.6,酸性呈黃色,堿性呈藍色,中間經過綠色(變色點為pH7.1)。色澤差異顯著,易于觀察。

    儀器藥品

    恒溫箱    天平

    培養皿    燒杯

    鑷子     漏斗

    濾紙     洋菜

    0.1%BTB溶液:稱取BTB0.1g,溶解于煮沸過的自來水中(配制指示劑的水應為微堿性,使溶液呈藍色或藍綠色,蒸餾水為微酸性不宜用),然后用濾紙濾去殘渣。濾液若呈黃色,可加數滴稀氨水,使之變為藍色或藍綠色。此液貯于棕色瓶中可長期保存。

    1%BTB瓊脂凝膠:取0.1%BTB溶液100ml置于燒杯中,將瓊脂剪碎后加入,用小火加熱并不斷攪拌。待瓊脂完全溶解后,趁熱倒在數個干潔的培養皿中,使成一均勻的薄層,冷卻后備用。

    操作步驟

    1.浸種

    同上述TTC法。

    2.顯色

    取吸脹的種子200粒,整齊地埋于準備好的瓊脂凝膠培養皿中,種子平放,間隔距離至少1cm。然后將培養皿置于30─35℃下培養2─4小時,在藍色背景下觀察,如種胚附近呈現較深黃色暈圈是活種子,否則是死種子。

    用沸水殺死的種子作同樣處理,進行對比觀察。

    3.計數種胚附近出現黃色暈圈的活種子數,算出發芽率。

    Ⅲ .紅墨染色法

    原理

    凡生活細胞的原生質膜具有選擇性吸收物質的能力,而死的種胚細胞原生質膜喪失這種能力,于是染料便能進入死細胞而染色。

    儀器藥品

    1.浸種

    同上述TTC法。

    2.染色

    取已吸脹的種子200粒,沿胚的中線切為兩半,將一半置于培養皿中,加入5%紅墨水(以淹沒種子為度),染色10梍15分鐘(溫度高時間可短些)。染色后倒去紅墨水,用水沖洗多次,至沖洗液無色為止。檢查種子死活,凡種胚不著色或著色很淺的為活種子;凡種胚與胚乳著色程度相同的為死種子。可用沸水殺死的種子作對照觀察。

    3.計數種胚不著色或著色淺的種子數,算出發芽率。

    Ⅳ.紙上熒光法

    原理

    具有生活力的種子和已經死亡的種子,它們的種皮對物質的透性是不同的,而許多植物的種子中又都含有熒光物質。利用對熒光物質的不同透性來區分種子的死活,方法簡單,特別是對十字花科植物的種子,尤為適用。

    儀器藥品

    紫外熒光燈   培養皿

    鑷子      濾紙(無熒光)

    操作步驟

    1.將完整無損的種子(油菜、白菜等十字花科植物的種子100粒,于25─30℃水中浸泡2─3小時。

    2.把已吸脹的種子,以3─5mm間隔整齊地排列在培養皿中的濕濾紙上,濾紙上水分不能過多,以免熒光物質流散彼此影響。培養皿可以不必加蓋,放置1.5─2小時,取去種子,將濾紙陰干。取出的種子仍按原來順序排列在另一培養皿中(以備驗證)。

    3.將陰干的濾紙置于紫外熒光燈下進行觀察,觀察如能在暗室中進行,則效果更好。

    4.在放過種子的位置上如見到熒光圈,則為死種子。如要確證它們是死種子,可將排列在另一培養皿中的這些種子揀出來,集中在一只培養皿的濕濾紙上,而讓不產生熒光圈的種子留在培養皿中,維持濕度,讓其自然發芽。

    5.3─4天后記錄培養皿中發芽種子數,填入下表中。

    此方法的成敗,首先決定于種子中熒光物質的存在,其次決定于種皮的性質。有些種子無論有無發芽能力,一經浸泡,即有熒光物質透出,大豆即屬此類;

    也有些種子由于種皮的不透性,無論種子死活,都不產生熒光圈,許多植物的種子都會碰到這種個別現象,此時只有用機械方法擦傷種皮,可重行驗證。相反,有時由于收獲時受潮,種皮已破裂,也會產生熒光圈,試驗時都應該注意。最好將浸泡液進行檢查,沒有熒光則適于作試驗材料。


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