關于全血的保存DNA提取pcr個人經驗
做了好多DNA提取保存，吃了很多虧給大家點建議吧：（有疑問可以回帖，有時間我會回答如果我知道）。 血液保存： EDTA抗凝最好，肝素也可以不過經常會影響后續試驗，一般可以保存在-20和-80保存3-5年沒有問題——保存時間越長似乎dna提取越少，再長時間我也沒有試過，注意解凍一次大概損失20%左右（提取感覺估計得到的可能不準），放的時間長也會降解一些。4°做好不要太長3天我是試過沒有問題再長不知道了。血凝塊就算了吧太難了結果不穩定。如果要分離血漿請在把血凍起來之前，其實越早越好否則有時候會溶血就麻煩，對提取DNA沒有影響，但是對提取血漿就問題大了。 DNA提取： 一般離心柱法提取比較純，片段短一些，損失大一些，沉淀法提取出來要長一些，效率比較高，估計沉淀法提取出來的是離心柱發的2-3倍量（注意了沉淀法有時候雜質太多70%沉淀這一步可以多1-2次）也可以自己配試劑提取摸索一下，我沒有試過，聽說不是很難。 我用過的試劑盒評價： （試......閱讀全文
DNA提取儀
DNA提取儀也叫核酸純化儀，是應用配套的核酸提取試劑來自動完成樣本核酸的提取工作的儀器。
DNA提取原則
1.保證核酸一級結構的完整性；2.核酸樣品中不應存在對酶有抑制作用的有機溶劑和過高濃度的金屬離子；3.其他生物大分子如蛋白質、多糖和脂類分子的污染應降低到最低程度；4.其他核酸分子，如RNA，也應盡量去除。
DNA怎么提取
DNA提取的幾種方法(1).濃鹽法利用RNP和DNP在電解溶液中溶解度不同，將二者分離，常用的方法是用1M 氯 納提取化鈉抽提,得到的DNP粘液與含有少量辛醇的 氯仿一起搖蕩,使乳化,再離心除去蛋白質,此時蛋白質凝膠停留在水相及氯仿相中間，而DNA位于上層水相中,用2倍體積95%乙醇可將DNA 鈉鹽
核酸提取——RNA提取與DNA的提取
核酸分為兩大類：一類為核糖核酸（RNA），另一類為脫氧核糖核酸（DNA）。核酸的分子量極大，從數萬到億萬。核酸是兩性化合物，在一定的等電點溶于水，其水溶液呈酸性，不溶于乙醇等有機溶劑。細胞內的核酸常和蛋白質結合成核蛋白。核糖核蛋白和脫氧核糖核蛋白在不同濃度的電解質溶液中 的溶解度有顯著區別，在一定濃
核酸提取——RNA提取與DNA的提取
核酸分為兩大類：一類為核糖核酸（RNA），另一類為脫氧核糖核酸（DNA）。核酸的分子量極大，從數萬到億萬。核酸是兩性化合物，在一定的等電點溶于水，其水溶液呈酸性，不溶于乙醇等有機溶劑。細胞內的核酸常和蛋白質結合成核蛋白。核糖核蛋白和脫氧核糖核蛋白在不同濃度的電解質溶液中 的溶解度有顯著區別，在一定濃
植物DNA提取中怎樣檢測提取到DNA質量
第一種方法是測量260/280的比例，判斷是否有蛋白質的污染。在260nm和280nm處測定DNA溶液的光吸收，A260與A280之比應在1.75-1.80之間。低于此值表明制備物中殘留蛋白質成分較高或含有酚，高于此值表明有RNA的殘留。第二種方法是凝膠電泳分析，看有無斷裂降解。影響DNA提取質量的
DNA提取方法DNA－提取后純化：將－DNA－與色譜柱結合
離液鹽對于裂解至關重要,而且對于將 DNA(或 RNA)與色譜柱結合也是如此。此外,為了增強和影響核酸與二氧化硅的結合,還添加了酒精。大多數情況下這是乙醇,但有時可能是異丙醇。乙醇百分比和體積有很大的影響。太多,你會帶入大量降解的核酸和小物種,這會影響 A260 讀數并降低你的一些產量。太少,可能難
種子DNA提取儀是種子DNA提取的好方法
??? 隨著社會和科技的發展，在種子研究等領域，快速而經濟的從種子樣品中提取高產量、高純度的基因組DNA已經成為植物分子生物學研究的首要問題，過去傳統的種子DNA提取方法非常復雜，需要用到大量的試劑，容器等，提取所需要花費的時間也非常長，因此是明顯不符合現代科學研究的發展需要的，而種子DNA提取
種子DNA提取儀對云南紫蘇的種子DNA提取
云南各地收集到20份紫蘇品種并進行了多年的栽培和經濟性狀評估,發現在紫蘇種內存在 著豐富的遺傳變異,并且已用形態聚類分析的方法對云南境內紫蘇的種下變異進行了探討,將其分為5個變種。由于形態特征是基因型和環境相互作用的產物,紫蘇 的形態聚類分析結果僅從表現型上間接地反映出了云南境內紫蘇的遺傳多樣性。試
DNA提取儀特點
大屏幕全中文操作 大屏幕全中文顯示；觸屏式操作，簡單易用。 精確控制 內建工程用電腦，無需再連接個人電腦；單機操作節省更多的空間與能源，并提供高穩定度的自動化控制系統。 溫度控制 可根據需求自定義裂解、洗脫溫度。 自由編程 強大的程序編輯功能；靈活、高效地定義您的應用，可滿足不同試劑要求。
DNA的提取實驗
掌握核酸提取與純化的方法，離心技術的合理使用．酚為有效的蛋白質變性劑，并且飽和的酚與水相有效的分開．因此，在含核酸的樣品加入酚，可將樣品中的蛋白質變性后形成沉淀層，本實驗來源于牡丹江醫學院 本科 5 年制檢驗專業實驗指導實驗方法原理酚為有效的蛋白質變性劑，并且飽和的酚與水相有效的分開．因此，在含核酸
λ噬菌體DNA提取
???λ噬菌體是最早使用的克隆載體，λ噬菌體的基因組是一長度約為50kb的雙鏈DNA分子，它在宿主細胞有兩種生活途徑，其一是裂解生長，環狀DNA分子在細胞內多次復制，合成大量噬菌體基因產物，裝配成噬菌體顆粒，裂解宿主菌再進行下一次感染；其二是溶源性生長，即感染細胞內λ噬菌體DNA整合到宿主菌染色體D
動物DNA提取實驗
標簽： ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?動物肝臟 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?DNA ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?提取動物肝臟DNA提取可以：（1）用于法醫學鑒定；（2）
DNA的提取實驗
? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 酚為有效的蛋白質變性劑，并且飽和的酚與水相有效的分開．因此，在含核酸的樣品加入酚，可將樣品中的蛋白質變性后形成沉淀層，位于水相與有機相的界畫，從而達到純化核酸的目的．但酚不能完全抑制RNA酶的活性，而且酚層中含有10－15%的水
DNA的提取實驗
實驗方法原理 酚為有效的蛋白質變性劑，并且飽和的酚與水相有效的分開．因此，在含核酸的樣品加入酚，可將樣品中的蛋白質變性后形成沉淀層，位于水相與有機相的界畫，從而達到純化核酸的目的．但酚不能完全抑制RNA酶的活性，而且酚層中含有10－15%的水,從而溶解一部分poly－（A）RNA。將酚與氯仿聯合使用
真菌DNA的提取
1.實驗試劑 (1)DNA提取液:0.2M Tris-HCl(pH 7.5),0.5M NaCl,0.01M EDTA,1%SDS (2)3M NaAc (3)TE:10 mmol/L Tris-HCl pH8.0,1 mmol/L EDTA (4)酚(pH8.0):氯仿:異戊醇(25:
DNA－提取小技巧
很多人都有上面這樣的想法吧？其實我當初也這樣的，結果呢？怎么也提不好，一提提了好幾個月呢。DNA 提取還真是說起來容易、做起來難。首先大家得明確一點，DNA 是遺傳信息的載體，獲得高分子量、高純度的 DNA 是你開展后續測序、雜交等實驗的前提。所以，注意了，要高分子量、高純度哦。我相信肯定有很多人一
外周血DNA提取技術
方法一：1. 標本預處理：將1ml EDTA抗凝貯凍血液于室溫解凍后移入5ml離心管中，加入1ml磷酸緩沖鹽溶液（PBS），混勻，3500g離心15min,傾去含裂解紅細胞上清。重復一次。用0.7ml DNA提取液混懸白細胞沉淀，37℃水浴溫育1h。2. 消化：上述DNA提取液混懸白細胞，37℃水浴
DNA的提取方法
一.酚抽提法：先用蛋酶K、SDS破碎細胞，消化蛋白，然后用酚和酚-氯萃取，高速離心后取上清，所得DNA大小為100-150kb二.甲酰胺解聚法：破碎細胞同上，然后用高濃度甲酰胺解聚蛋白質與DNA的結合，再透析獲得DNA可得DNA200kb左右。三.玻璃棒纏繞法：用鹽酸胍裂解細胞，將裂解物鋪于乙醇上，
質粒DNA提取技術
實驗概要通過本實驗，學習和掌握堿裂解法提取質粒的方法和技術。實驗原理質粒是基因工程中常用的載體之一。質粒是染色體外小型雙鏈環狀的DNA，大小在1～200kb之間。堿裂解法提取質粒是根據共價閉合環狀DNA與線性染色體DNA在拓撲學上的差異來分離它們的。在pH值介于12.0～12.5這個狹窄的范圍內，線
血液DNA的提取
Part A: Purifying nuclear pellets.1) Add 50-60μl fresh, packed red blood cells (RBC) to 700μl PBS. Mix by inversion.2) Add 700-800μl Lysis buffer. Clo
植物DNA提取實驗
機械法 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 這是一種快速簡便提取植物總DNA的方法。先將新鮮的葉片在液氮中研磨，以機械力破碎細胞壁，然后加入十六烷三甲基溴化銨分離緩沖液，使細胞膜破
質粒DNA提取實驗
實驗方法原理?質粒多為一些雙鏈、環狀的DNA分子，是獨立于細菌染色體之外進行復制和遺傳的輔助性遺傳單位。質粒是進行分子生物學實驗操作，進行遺傳工程改良物種等工作時最主要的DNA載體。?提取質粒的基本步驟分為三步：①細菌的培養和質粒的擴增②細菌菌體的裂解③質粒DNA的純化實驗材料?大腸桿菌試劑、試劑盒
dna提取實驗步驟
利用核酸溶解于水的性質，將組織細胞破碎后，用低鹽溶液除去RNA，將沉淀溶于水中，使DNA充分溶解于水中，離心后收集上清液。在上清中加入固體氯化鈉調節至2.6M。加入2倍體積95%乙醇，立即用攪拌法攪出。分別用66%，80%和95%乙醇以及丙銅洗滌，最后在空氣中干燥，既得DNA樣品。此法提取的DNA中
植物DNA提取實驗
實驗方法原理?真核細胞基因組在提取過程中一般有以下幾步，首先是機械法破細胞抽提；然后去除蛋白質，糖類等細胞內雜質污染；最后純化出DNA。實驗材料?幼嫩的植物材料試劑、試劑盒?液氮CTAB抽提緩沖液NaACTris-HCl EDTA氯仿異戊醇TE buffer儀器、耗材?瓷研缽離心管離心機實驗步驟 一
質粒DNA的提取
實驗概要? ? ? ? 通過本實驗學習和掌握堿裂解法提取質粒。實驗原理? ? ? ? ?堿裂解法提取質粒是根據共價閉合環狀質粒DNA與線性染色體DNA在拓撲學上的差異來分離它們。在pH值介于12.0～12.5這個狹窄的范圍內，線性的DNA雙螺旋結構解開而被變性，盡管在這樣的條件下，共價閉環質粒DNA
DNA提取方法介紹
DNA提取主要是CTAB方法，其他的方法還有物理方式如玻璃珠法、超聲波法、研磨法、凍融法。化學方式如異硫氰酸胍法、堿裂解法。生物方式：酶法。根據核酸分離純化方式的不同有硅質材料、陰離子交換樹脂等。
細菌DNA提取方案
細菌DNA提取方案：革蘭氏陰性菌，如E.coli，一般有三種可以選擇的方法。一、水煮模板法——主要用于PCR反應1、接種單菌落于LB或腦心平板，連續畫線，37攝氏度培養18－24小時。2、刮取1～2接種環菌苔加入150微升三蒸水中，混勻，100攝氏度煮沸10分鐘。3、12000轉/分鐘 離心10分鐘
植物DNA提取原理
通常采用機械研磨的方法破碎植物的組織和細胞，由于植物細胞勻漿含有多種酶類(尤其是氧化酶類)對DNA的抽提產生不利的影響，在抽提緩沖液中需加入抗氧化劑或強還原劑(如巰基乙醇)以降低這些酶類的活性。在液氮中研磨，材料易于破碎，并減少研磨過程中各種酶類的作用。十二烷基肌酸鈉(sarkosyl)、十六烷基三
動物DNA提取實驗
實驗方法原理?在濃氯化鈉（1-2 mol/L）溶液中，脫氧核糖核蛋白的溶解度很大，核糖核蛋白的溶解度很小，在稀氯化鈉（0.14 mol/L）溶液中，脫氧核糖核蛋白的溶解度很小，核糖核蛋白的溶解度很大。因此，可利用不同濃度的氯化鈉溶液，將脫氧核糖核蛋白和核糖核蛋白從樣品中分別抽提出來。?將抽提得的