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用0.14mol/L氯化鈉溶液將組織作勻漿并反復提取細胞質中的核蛋白,而留下含有DNA的細胞核物質,然后用10%乙酸調至pH4.2沉淀,離心棄去上清液,先用0.5mol/L氯化鈉溶液沉淀后用水洗滌沉淀,得核糖核蛋白后溶解于0.5mol/L碳酸氫鈉溶液中,離心,取上清液,調至pH4.2沉淀,以0.5mol/L氯化鈉溶液再一次除脫氧核糖核蛋白。核糖核蛋白中的蛋白質可用含少量辛醇的氯仿抽提除去,核酸留在碳酸氫鈉溶液中,加入乙醇,RNA以鈉鹽形式沉淀出來。破碎細胞做成勻漿時,加入去污劑十二烷基磺酸鈉或二甲苯磺酸鈉,加入含水苯酚,與勻漿一起振蕩,DNA與蛋白質沉淀于苯酚層,水層中含有RNA和多糖,然后用乙醇使RNA沉淀。苯酚法是目前提取不降解的RNA最有效的方法。......閱讀全文
用0.14mol/L氯化鈉溶液將組織作勻漿并反復提取細胞質中的核蛋白,而留下含有DNA的細胞核物質,然后用10%乙酸調至pH4.2沉淀,離心棄去上清液,先用0.5mol/L氯化鈉溶液沉淀后用水洗滌沉淀,得核糖核蛋白后溶解于0.5mol/L碳酸氫鈉溶液中,離心,取上清液,調至pH4.2沉淀,以0.5
DNA主要存在于細胞核中,絕大數以脫氧核糖核蛋白形式存在。以1mol/L氯化鈉溶液提取,將得到的脫氧核苷酸核蛋白黏液與含少量辛醇和戊醇的氯仿一起搖蕩,除去蛋白質。
由于大部分蛋白質都能溶于水、稀鹽、稀酸或稀堿溶液,所以蛋白質的提取一般是以水溶液為主,其中鹽溶液和緩沖溶液對蛋白質的穩定性好、溶解度大,是提取蛋白質最常用的溶劑。當細胞粉碎后,用鹽溶液或緩沖溶液提取蛋白質時,應注意以下一些條件。 (1)鹽濃度 常用等滲鹽溶液,尤其以0.02～0.05mol/L
一般要在測定之前進行樣品的前處理，即進行分離、純化、濃集，必要時還需對待測組分進行化學衍生化，從而為測定創造良好的條件。
圖1.? Co-Sense for BA系統基本配置圖。 在血漿、血清和尿樣等生物樣品的分析中，在前處理中去除蛋白和其它基地物質等大分子的干擾，對于目標小分子藥品的分析是非常重要的。本文介紹了一種有效的在線預處理柱，實驗表明效果良好。 Co-Sense fo
圖1.? Co-Sense for BA系統基本配置圖。 在血漿、血清和尿樣等生物樣品的分析中，在前處理中去除蛋白和其它基地物質等大分子的干擾，對于目標小分子藥品的分析是非常重要的。本文介紹了一種有效的在線預處理柱，實驗表明效果良好。 Co-Sense for B
當待測組分(主要是各種多肽激素、各種酶以及各種基因工程的產物如胰島素、生長激素等)存在于生物體細胞內及多細胞生物組織中時,需在分析測定之前將細胞和組織破碎,使這些待測組分充分釋放到溶液中去,不同的生物體或同一生物體的不同組織,其細胞破碎的難易程度不一樣,使用的方法也不完全相同。如動物胰臟、肝臟、腦
由于傳統的樣品前處理方法存在諸多問題和缺點，近年來，分析工作者改進并創新了一系列的樣品前處理技術，包括各種前處理新方法與新技術的研究及這些技術與分析方法在線聯用設備的研究兩個方面。如：液-液微萃取、自動索式提取、吹掃捕集、微波輔助萃取、超聲波萃取、超臨界流體萃取、固相萃取、固相微萃取、頂空法、膜萃
如何對越來越復雜的樣品基質進行痕量分析及其樣品前處理已成為業界的一大挑戰。為了滿足全球日益增長的人口需要，食物產量需要很大的提升，這也導致了多種農藥的使用。但農藥的施放有時并非完全合理，有時農產品本身不需要，也會被施放，所以檢測工作者必須不斷改善檢測技術，對越來越多的農藥進行痕量檢測。而此時
實驗概要本實驗介紹了樣品總RNA的提取方法。完整RNA的提取和純化，是進行RNA方面的研究工作，如Nothern雜交、mRNA分離、RT-PCR、定量PCR、cDNA合成及體外翻譯等的前提。所有RNA的提取過程中都有五個關鍵點，即：樣品細胞或組織的有效破碎；有效地使核蛋白復合體變性；對內源RNA酶的