實驗動物手術臺的技術條件
實驗動物手術臺是指用于固定或支撐動物并對動物實施解剖、手術的工作臺及其輔助裝置。它主要由臺面、支架、固定裝置、抽屜(物品箱)、機械或電控裝置等部件構成。其大小、規格和形式,可因各種動物和實驗不同而異。手術臺可分為大動物手術臺和小動物手術臺。大動物手術臺適用于犬、豬、羊和兔等實驗動物；小動物手術臺適用于大鼠、小鼠、地鼠、豚鼠等小動物。通過比較國內外各種樣式的實驗動物手術臺,我們認為手術臺應具備以下一些特點:(1)結構牢固，經久耐用；(2)臺面中央有V形等斜面,適于動物的固定；(3)動物固定裝置使用操作快捷、方便、牢靠，且不傷及動物；(4)臺面要光潔、平滑、易清洗；(5)臺面高度和傾斜度任意可調，以適于實驗操作；(6)動物手術臺應輕巧、美觀、易移動；(7)支撐穩定，腳輪帶制動，以保證手術實施時的穩定性。1 臺面臺面面積應滿足放置動物的需要。在臺面中部沿長軸方向，可有多種類型溝槽(如弧形、梯形、V形等)，以適用于動物的支撐與固定。根據......閱讀全文
實驗動物手術臺的技術條件
實驗動物手術臺是指用于固定或支撐動物并對動物實施解剖、手術的工作臺及其輔助裝置。它主要由臺面、支架、固定裝置、抽屜(物品箱)、機械或電控裝置等部件構成。其大小、規格和形式,可因各種動物和實驗不同而異。手術臺可分為大動物手術臺和小動物手術臺。大動物手術臺適用于犬、豬、羊和兔等實驗動物；小動物手術臺適用
動物實驗技術1
實驗動物常用作病原微生物的分離和鑒定，進行動物接種實驗應選擇易感性高、健康的動物。常用的動物有小鼠、豚鼠和家兔。根據實驗要求可通過皮下、皮內、肌肉、腹腔、靜脈等途徑注射。感染動物死亡后，必要時進行尸體解剖并作病原體的檢查。 一、實驗動物接種法 （一）小白鼠接種法 【
動物實驗技術1
實驗動物常用作病原微生物的分離和鑒定，進行動物接種實驗應選擇易感性高、健康的動物。常用的動物有小鼠、豚鼠和家兔。根據實驗要求可通過皮下、皮內、肌肉、腹腔、靜脈等途徑注射。感染動物死亡后，必要時進行尸體解剖并作病原體的檢查。一、實驗動物接種法（一）小白鼠接種法【材料】1．小白鼠。2．無菌注射器(1ml
動物實驗技術2
2．于第①、②、③管內分別加乙型溶血性鏈球菌培養物、四聯球菌培養物、生理鹽水各0.5m1。 3．上述3支試管每管加入5%氯化鈣0.2ml，搖勻，置37℃水浴10min，待血液凝固，再繼續37℃水浴約30min，觀察結果。 【結果】 l．觀察時，可將小試管慢慢傾斜至30°
國產機器人從實驗室走向手術臺
原文地址：http://news.sciencenet.cn/htmlnews/2023/9/508429.shtm
動物實驗的基本操作技術
動物實驗的基本操作技術實驗動物(experimental animals)是指經過人工飼養、繁育，對其攜帶的微生物及寄生蟲實行控制，遺傳背景明確或者來源清楚，應用于科研、教學、生產和檢定以及其他科學實驗的動物。這些個體具有較好的遺傳均一性、對外來刺激的敏感性和實驗再現性。?一、常用實驗動物的種類
動物實驗基本技術1
第一節 實驗動物的抓取和固定在進行實驗時，為了不損傷動物的健康，不影響觀察指標，并防止被動物咬傷，首先要限制動物的活動，使動物處于安靜狀態，工作人員必須掌握合理的抓取固定方法。抓取動物前，必須對各種動物的一般習性有所了解。操作時要小心仔細、大膽敏捷、熟練準確、不能粗暴，不能恐嚇動物，同時，要愛惜動物
動物實驗基本技術3
第七節 實驗動物的處死當實驗中途停止或結束時，實驗者應站在實驗動物的立場上以人道的原則去處置動物，原則上不給實驗動物任何恐怖和痛苦，也就是要施行安樂死。安樂死是指實驗動物在沒有痛苦感覺的情況下死去。實驗動物安樂死方法的選擇取決于動物的種類與研究的課題。一、蛙 類常用金屬探針插入枕骨大孔,破壞腦脊髓的
動物實驗基本技術2
第五節 實驗動物的采血法實驗研究中，經常要采集實驗動物的血液進行常規質量檢測、細胞學實驗或進行生物化學分析，故必須掌握正確的采集血液的技術。采血方法的選擇，主要決定于實驗的目的和所需血量以及動物種類。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血：需血量很少時常用本法，如作紅、白細胞計數、血紅蛋白測定、制作
動物實驗基本技術2
第三節 實驗動物的麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任務是消除實驗過程中所至的疼痛和不適感覺，保障實驗動物的安全，使動物在實驗中服從操作，確保實驗順利進行。一、常用的麻醉藥(一)常用局部麻醉劑：普魯卡因，此藥毒性小，見效快，常用于局部浸潤麻醉，用時配成0.5％～1％；利多卡因，此藥見效快，組
動物實驗基本技術2
第五節 實驗動物的采血法實驗研究中，經常要采集實驗動物的血液進行常規質量檢測、細胞學實驗或進行生物化學分析，故必須掌握正確的采集血液的技術。采血方法的選擇，主要決定于實驗的目的和所需血量以及動物種類。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血：需血量很少時常用本法，如作紅、白細胞計數、血紅蛋白測定、制作
動物實驗基本技術2
第三節 實驗動物的麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任務是消除實驗過程中所至的疼痛和不適感覺，保障實驗動物的安全，使動物在實驗中服從操作，確保實驗順利進行。 一、常用的麻醉藥 (一)常用局部麻醉劑：普魯卡因，此藥毒性小，見效快，常用于局部浸潤麻醉，用時配成0.5％
動物實驗基本技術1
第一節 實驗動物的抓取和固定在進行實驗時，為了不損傷動物的健康，不影響觀察指標，并防止被動物咬傷，首先要限制動物的活動，使動物處于安靜狀態，工作人員必須掌握合理的抓取固定方法。抓取動物前，必須對各種動物的一般習性有所了解。操作時要小心仔細、大膽敏捷、熟練準確、不能粗暴，不能恐嚇動物，同時，要愛惜動物
動物實驗基本技術3
第七節 實驗動物的處死當實驗中途停止或結束時，實驗者應站在實驗動物的立場上以人道的原則去處置動物，原則上不給實驗動物任何恐怖和痛苦，也就是要施行安樂死。安樂死是指實驗動物在沒有痛苦感覺的情況下死去。實驗動物安樂死方法的選擇取決于動物的種類與研究的課題。一、蛙 類常用金屬探針插入枕骨大孔,破壞腦脊髓的
動物實驗基本技術4
三、實驗動物的準備本文主要敘述制備轉基因鼠的實驗程序。(一)不育雄性公鼠:結扎公鼠與母鼠交配以后產生假孕母鼠。受結扎的公鼠需8周以上，對種系無特殊要求。在正式實驗前，結扎公鼠需與性成熟的雌性小鼠交配，反復交配兩次或三次，經檢查雌體有陰道栓，但均不懷孕產仔，則證明結扎成功。結扎公鼠使母鼠產生陰道栓的能
動物實驗的基本操作技術1
實驗動物實驗動物(experimental animals)是指經過人工飼養、繁育，對其攜帶的微生物及寄生蟲實行控制，遺傳背景明確或者來源清楚，應用于科研、教學、生產和檢定以及其他科學實驗的動物。這些個體具有較好的遺傳均一性、對外來刺激的敏感性和實驗再現性。一、常用實驗動物的種類和特點（一）狗(do
動物實驗的基本操作技術2
5．非純系動物(no-sheer series)一般是指任意交配繁殖的雜種動物。此類動物具有生命力旺盛、適應性強、繁殖率高、生長快、易于飼養管理等優點。其缺點是個體差異大、反應性不規則、實驗結果的重復性差。由于其中包含有最敏感的與最不敏感的兩種極端的個體，因此適用于篩選性實驗。雜種動物比較經濟、教學
實驗動物的外科技術及急救實驗
實驗步驟一、實驗動物常用的外科基本技術??? （一）基本操作技術???? 1.?切開 根據實驗要求確定手術切口的部位及大小。切開時先繃緊皮膚，將刀刃與皮膚垂直，用力要得當，一次切開皮膚全層，切縫整齊而不偏斜。切開皮膚及皮下組織時，一般要求按解剖層次逐層切開，注意止血，避免損傷深層的重要組織器官（圖1
動物實驗基本操作技術之一“實驗動物抓取與固定”
（一）小鼠用右手提起小鼠尾部，放在實驗臺上，當其向前爬行時，左手抓住兩耳及頭頸部皮膚，再置小鼠于左手心，拉直四肢并用手指夾住肢體固定。右手可行注射或其它操作。小鼠固定器及固定器固定法（二）大鼠右手輕輕抓住大鼠尾部向后輕拉，左手抓緊鼠兩耳及頭頸部皮膚，并將其固定在左手中，右手可行注射或其它操作。大鼠固
動物實驗技術：轉基因小鼠制備實驗
1、 選取7~8周齡雌性小鼠，陰道口封閉，作為供體，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。2、 47~48小時后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并與正常公鼠合籠；另取數只適齡母鼠（2月齡以上）作為受體，陰道口潮紅，與結扎公鼠合籠。3、第二天上午9:00前觀察供體、受體，
藥理毒理動物實驗技術服務|實驗技術服務
測序實驗流程：藥理毒理動物實驗服務供應人elisa試劑盒、大鼠elisa試劑盒、小鼠elisa試劑盒、兔elisa試劑盒等。標本有：血清、血漿、細胞上清液、尿液、體液、灌洗液、腦脊髓、心房水、胸房水、組織等。種屬：人、大鼠、小鼠、兔子、豬、犬、猴、馬、牛、羊、雞、鴨、魚等。常用生化試劑作用： ??1
實驗動物的外科技術及急救實驗（一）
一、實驗動物常用的外科基本技術?（一）基本操作技術?1.?切開 根據實驗要求確定手術切口的部位及大小。切開時先繃緊皮膚，將刀刃與皮膚垂直，用力要得當，一次切開皮膚全層，切縫整齊而不偏斜。切開皮膚及皮下組織時，一般要求按解剖層次逐層切開，注意止血，避免損傷深層的重要組織器官（圖1，圖2）。???圖1圖
實驗動物的外科技術及急救實驗（二）
3.?組織分離法 分離組織的目的在于充分顯露深部組織，造成手術徑路，便于切除病灶。操作時要注意以下原則：①在同一平面上力求一次垂直切開，以保切口邊緣整齊，禁止斜切和鋸切，以減少損傷，便于愈合。②在切開多層組織時，一般應按組織層次分層切開，切口大小應適當。③切開肌肉時，一般應沿肌纖維方向進行。④要確保
實驗動物的外科技術及急救實驗（三）
（二）基本手術?1.頸部手術?（1）氣管插管術：以家兔為例。術中需使用常用手術器械、絲線、棉球、“Y”形氣管套管、手術臺、20%烏拉坦等。手術前，動物麻醉（20%烏拉坦1g/kg體重耳緣靜脈注射），仰臥位固定，備皮。然后，用解剖刀在頸部，自甲狀軟骨下緣，沿下中線作一長約5～7cm皮膚切口，暴露胸骨舌
實驗動物的外科技術及急救實驗（四）
4.股部手術?（1）股動、靜脈和股神經分離術：股三角內的血管、神經包括股動脈、股靜脈和股神經，處于一層深筋膜之下。分離時，可用蚊式止血鉗在恥骨肌與縫匠肌交點處小心地沿縫匠肌后部內側緣分離，并將縫匠肌后部輕輕向外拉開，其下方即見深筋膜包圍著的血管神經束。仔細分離深筋膜后，血管、神經即完全暴露。股靜脈位
實驗動物染毒途徑和技術3
經皮膚染毒的目的有兩種。一種是經皮染毒毒性試驗，如經皮Lao測定常用大鼠，皮膚致癌試驗常用小鼠‘另一種是皮膚刺激和致敏試驗，皮膚刺激試驗常用兔和豚鼠，皮膚致敏試驗用豚鼠。 被毛的去除：試驗前用機械法(剪剃毛)或化學法(硫化胸或硫化鋇)脫毛。對兔和嚙6類常用的脫毛劑處方為：①硫
實驗動物染毒途徑和技術2
? 實驗動物 呼吸量 最低呼吸量 靜式染毒2h可放動物數
實驗動物染毒途徑和技術1
在毒理學試驗中染毒途徑的選擇，應盡可能模擬人在接觸該受試物的方式。最常用的染毒途徑為經口、經呼吸道；經皮及注射途徑。染毒的途徑和方法根據實驗目的、實驗動物種類和藥物劑型等情況確定。不同途徑的吸收速率，一般是靜脈注射>吸入>肌內注射>腹腔注射>皮下注射>經口>皮內注射>其他途徑(如經皮等)
實驗動物外科基本操作技術
1.?切開根據實驗要求確定手術部位切口的大小。切開時先繃緊皮膚,將刀刃與皮膚垂直,用力要得當,1?次切開皮膚全層,切縫整齊而不偏斜。切開皮膚及皮下組織時,要求按解剖層次切開,盡量避開血管并注意止血,避免損傷深層的重要組織器官。2.?止血止血是手術操作中的重要環節。手術過程中止血完善與否,不僅直接影響
實驗動物染毒途徑和技術4
（三)經皮膚染毒> 經皮膚染毒的目的有兩種。一種是經皮染毒毒性試驗，如經皮Lao測定常用大鼠，皮膚致癌試驗常用小鼠‘另一種是皮膚刺激和致敏試驗，皮膚刺激試驗常用兔和豚鼠，皮膚致敏試驗用豚鼠。 被毛的去除：試驗前用機械法(剪剃毛)或化學法(硫化胸或硫化鋇)脫毛。對兔和嚙6類常用的脫毛劑處方為：