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  • 甲醇酵母系統表達的影響因素3

    甲醇誘導的方式、用量、誘導時間都會影響外源蛋白的表達水平。在誘導期間每天應往培養基中補加甲醇,以彌補甲醇的消耗和蒸發;但由于培養條件和轉化子表型不同,添加甲醇的量也有所不同,一般添加量為培養基體積的0.5%~1%。誘導時間過短則表達量很低,過長則外源蛋白的降解增加,應根據菌株的需要選擇合適的誘導時間,一般誘導時間在150 h左右。另外,甲醇誘導表達時,培養溫度不宜超過30℃。7、產物穩定性酵母細胞膜上有一種KEX-2樣蛋白水解酶,能專一性水解a因子前體中羧基端的肽鍵,即連續兩個堿性氨基酸(如 LySArg,LysLys,ArgArg,LsArg),酵母基因工程表達產物發生降解現象的原因就在于此。改變培養基的PH值、加入適量的酵母提取物和蛋白胨或酪蛋白水解物,都能夠提高外源蛋白的穩定性,而某些酶抑制劑如EDTA,雖然也能增加其穩定性,但卻常會使一些原先并不明顯的蛋白變得非常明顯,影響其使用效果。分泌蛋白的水解穩定性可通過改......閱讀全文

    酵母表達外源蛋白(foreign-protein)(4)

    15、菌體密度:菌體是在BMMY中培養的,可以不用BMMY做對照,在600nm處測OD值,培養基和PBS光吸收都很低,PBS更方便。麥芽浸提液培養酵母(不換液,補料),生長階段結束后,密度可達到10-12,誘導培養結束后,密度可達到18左右。如果用1體積的BMGY,在生長階段結束后,換液時,加入1/

    酵母表達外源蛋白(foreign-protein)(5)

    或者第5步和第6步改為丙酮洗:5.加入200ul冰冷的丙酮,用手指輕彈EP管,洗去管底和管壁殘余的TCA。6.15000g,離心10-20分鐘,倒掉上清,將EP管倒扣在吸水紙上輕輕控幾下,除去殘余在管口的液體。樣品是酵母細胞超聲后離心獲得的上清,用Loading buffer溶解蛋白沉淀,始終不

    酵母表達外源蛋白(foreign-protein)(1)

    1、 菌株用GS115表達不出蛋白,換KM71H后,大部分克隆能表達。2、溫度: 在28度和室溫下誘導表達,表達水平可能都不低。3、pH手冊上用6.0,pH提高到6.8,不表達的蛋白可能就表達出來。BMMY的pH7.0-7.5比較合適。國內外做的最好的rHSA,最適pH大概 5-6左右。pH3的時候

    酵母表達外源蛋白(foreign-protein)(3)

    12、蛋白降解分泌表達的目標蛋白比胞內蛋白確實容易被降解。可以嘗試以下幾種辦法:1、盡可能降低培養液的pH值減少酶活,酵母生長pH值比較廣,4~7都可以試一下;2、多試幾種蛋白添加劑,充當酶解底物(比如酵母酸);3、摸索最適下罐(搖瓶也一樣),寧可少表達點也別給降解光了。實在沒辦法,只好換菌株或做p

    酵母表達外源蛋白(foreign-protein)(2)

    如果是用自己配置的培養基,如玉米浸提液、麥芽浸提液、麥麩浸提液等等,可以不用換液,采取添料來維持酵母對培養基的營養需要。用無機鹽進行大規模發酵,更省錢。大規模發酵時,甲醇的流加速度增加不要太快。另外使用純氧并不昂貴,在武漢買個鋼瓶600元左右,一瓶純氧20元。一個批次100h左右估計3-4 瓶氧氣。

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    畢赤酵母表達(pichia-pastoris-expression-)實驗手冊(4)

    三.主要試驗環節的操作3.1 酵母菌株的分離純化接種GS115于5ml YPD液體培養基,30℃,200rpm振蕩過夜,涂布 YPD平板,30℃培養48 小時,用 YNB基本培養基和含His的補充培養基作點種分離純化,挑選在補充培養基生上生長而在基本培養基上不生長的單菌落劃YPD平板,4℃保存。3.

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    畢赤酵母表達(pichia-pastoris-expression-)實驗手冊(5)

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      選擇合適的蛋白表達系統是重組蛋白成功表達的關鍵。需要考慮以下方面的因素,包括:目標蛋白性質、用途、蛋白質產量和成本。此外,許多蛋白質表達項目也存在著風險,尤其是大蛋白、膜蛋白、核蛋白和具有大量翻譯后修飾的蛋白質。   目前卡梅德生物可以提供幾種表達系統可供客戶選擇,不同的系統有不同的特性和應用

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