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細胞增殖是腫瘤研究的必備實驗之一。最簡單直接的檢測細胞增殖的方法就是在不同時間點進行細胞計數，但是在96孔板甚至384孔板的實驗設置下，這無疑是難以操作的。于是，研究者們更傾向于用間接方法研究細胞增殖，比如基于線粒體內脫氫酶還原能力的MTT, MTS, CCK-8法，還有基于胞內ATP水平的CellTiter-Glo, ATPlite等。原理上，這些方法都是以細胞的代謝水平來代表細胞數量。但是大家有沒有懷疑過這些間接方法真能準確反映細胞的生長狀態嗎？美國Genentech公司的科學家對這一問題進行了深入的研究。在2013年發表的一篇文獻中，作者選擇了兩種最常見的檢測細胞增殖的方法 – MTS和 CellTiter-Glo和直接細胞計數法進行比較，得到了意想不到的結果。 如上圖所示，HT29細胞被6種不同藥物處理48小時后用不同方法對細胞增殖進行了分析。從生長曲線來看，這三種方法得到的結果之間有不小的......閱讀全文
細胞增殖是腫瘤研究的必備實驗之一。最簡單直接的檢測細胞增殖的方法就是在不同時間點進行細胞計數，但是在96孔板甚至384孔板的實驗設置下，這無疑是難以操作的。于是，研究者們更傾向于用間接方法研究細胞增殖，比如基于線粒體內脫氫酶還原能力的MTT, MTS, CCK-8法，還有基于胞內ATP水平的Ce
這么好的方法當然需要一個強大的檢測儀器來支撐 – Celigo成像細胞定量分析儀：● 明場+四色熒光● 全孔成像，圖片清晰，適用于6-1536孔板● 定量分析全孔細胞數目● 軟件自帶流式設門分析功能● 高速同步成像和分析，15分鐘內完成一塊96孔板的免疫殺傷檢測現在小編就以NK細胞的ADCC（抗體依
2018年的諾貝爾生理學或醫學獎授予了兩位免疫學家，分別是美國的James P Allison和日本的本庶佑教授，以表彰他們的原創發現推動了免疫學研究的進程，促使了癌癥治療領域革命性新藥物的面世。如今炙手可熱的PD-1， CAR-T，TCR-T技術等都要歸功于這一偉大發現及其臨床應用。如果你的工作也
前言 隨著人類對生物學領域深入探索和科技創新的不斷發展，目前越來越多的研究院所和生物制藥公司將細胞水平的功能性研究、模型建立及藥物篩選做為一個重要的研究/研發手段。而高內涵成像分析系統就為這種細胞水平的研究提供了集高分辨率、自動化、智能化及海量信息為一體的新的檢測平臺。干細胞(stem
Biogen于1978年由幾位著名的生物學家，包括愛丁堡大學的Kenneth Murray、麻省理工學院的Phillip Allen Sharp，以及哈佛大學的Walter Gilbert和Charles Weissmann在日內瓦成立。后來，Walter Gilbert和Phil
干細胞涉及到個體發育、器官移植、延緩衰老、癌癥治療等方方面面。單個的干細胞是如何分裂、分化成新的細胞、組織或器官呢？在成體中，干細胞又是如何完成細胞修復更新的使命呢？在下面的文章中，我們將介紹如何借助共聚焦、雙光子等顯微成像分析技術一一解決在干細胞研究中的這些問題。激光共聚焦掃描顯微鏡可以精確可控的
蝕斑實驗流程示例見下圖：經典的病毒感染滴度就是通過蝕斑實驗來測定的。通常，將細胞接種在多孔培養板中形成匯合的單細胞層。在第二天，將細胞用稀釋的病毒樣品接種一段特定的時間（時間取決于滴定的輔助病毒）。除去接種物并用新鮮培養基換液，再將細胞孵育若干天，直到形成大到足以通過肉眼觀察和計數的蝕斑。傳統的蝕斑
Disucssion這里所介紹的使用熒光檢測的自動蝕斑計數方法有助于加快蝕斑檢測的速度。但是，有幾種類型的感染性病毒滴度實驗不會形成蝕斑。半數組織培養感染劑量（TCID50）就是另一種常用的病毒滴定方法。TCID50是終點稀釋測定法，用于確定感染50％接種細胞所需的病毒樣品稀釋度。由于蝕斑和TCID
光聲成像技術可以實現類似超聲成像技術達到的深層組織成像; 另一方面, 光聲成像技術以組織的光學吸收系數為基礎, 所以又能得到高對比度成像, 同時又避免了純光學成像中光學散射的影響。在無損傷前提下，對小動物進行活體成像。Endra小動物光聲成像系統既是應用光聲技術的新型的無損傷
根系是植物的重要組成部分，植物吸收土壤中的水分與養分全依賴根系，所以根系的研究對于植物各學科來說都至關重要，但是根系分布在地面以下，而且是動態生長的，這就給根系的監測帶來了很多困難。《Nature》雜志于2004年6月出版了一本專輯認為“人類對自己腳下土壤的了解遠遠不及對宇宙的了解”，更是佐證了地下