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  • 發布時間:2019-11-12 10:11 原文鏈接: 淋巴細胞雜交瘤單克隆抗體技術

    • 淋巴細胞雜交瘤單克隆抗體技術

               

    實驗方法原理 1975年,Kohler和Milstein發現將小鼠骨髓瘤細胞和綿羊紅細胞免疫的小鼠脾細胞進行融合,形成的雜交細胞既可產生抗體,又可無限增殖,從而創立了單克隆抗體雜交瘤技術。這一技術上的突破不僅為醫學與生物學基礎研究開創了新紀元,也為臨床疾病的診、防、治提供了新的工具。
     

    制備單克隆抗體包括動物免疫、細胞融合、選擇雜交瘤、檢測抗體、雜交瘤細胞的克隆化、凍存以及單克隆抗體的大量生產,要經過幾個月的一系列實驗步驟。

    實驗材料

    小鼠 骨髓瘤細胞

    試劑、試劑盒

    NCS

    儀器、耗材

    CO2孵箱 培養板

    實驗步驟

    一、細胞融合前準備

     

    1.  免疫方案

     

    選擇合適的免疫方案對于細胞融合雜交的成功,獲得高質量的McAb至關重要。一般要在融合前兩個月左右確立免疫方案開始初次免疫,免疫方案應根據抗原的特性不同而定。

     

    (1)顆粒性抗原免疫性較強,不加佐劑就可獲得很好的免疫效果。下面以細胞性抗原為例的免疫方案

     

    初次免疫                 1×107/0.5 ml ip (腹腔內注射)

    ↓ 2~3周后

    第二次免疫                1×107/0.5 ml ip

    ↓ 3周后

    加強免疫(融合前三天)1×107/0.5 ml ip或iv(靜脈內注射)

    取脾融合

     

    (2)可溶性抗原免疫原性弱,一般要加佐劑,常用佐劑:福氏完全佐劑,福氏不完全佐劑。要求抗原和佐劑等體積混合在一起,研磨成油包水的乳糜狀,放一滴在水面上不易馬上擴散呈小滴狀表明已達到油包水的狀態。商品化福氏完全佐劑在使用前須振搖,使沉淀的分枝桿菌充分混勻。

         

    初次免疫  Ag 1~50 μg 加福氏完全佐劑皮下多點注射(一般0.8~1 ml 0.2 ml/點)

    ↓3周后

    第二次免疫 劑量同上,加福氏不完全佐劑皮下或ip(ip劑量不宜超過0.5 ml)

    ↓3周后

    第三次免疫 劑量同上,不加佐劑,ip(5~7天后采血測其效價,檢測免疫效果)

    ↓2~3周后

    加強免疫,劑量50~500 μg為宜,ip或iv

    ↓3天后

    取脾融合

     

    目前,用于可溶性抗原(特別是一些弱抗原)的免疫方案也不斷有所更新,如

    ①將可溶性抗原顆粒化或固相化,一方面增強了抗原的免疫原性,另一方面可降低抗原的使用量。

    ②改變抗原注入的途徑,基礎免疫可直接采用脾內注射。

    ③使用細胞因子作為佐劑,提高機體的免疫應答水平,促進免疫細胞對抗原反應性。

     

    2.  飼養細胞
     

    在制備單克隆抗體過程中,許多環節需要加飼養細胞,如:在雜交瘤細胞篩選、克隆化和擴大培養過程中,加入飼養細胞是十分必要的。常用的飼養細胞有:小鼠腹腔巨噬細胞(較為常用)、小鼠脾臟細胞或小鼠胸腺細胞,也有人用小鼠成纖維細胞系3T3經放射線照射后作為飼養細胞,使用比較方便,照射后可放入液氮罐長期保存,隨用隨復蘇。

         

    小鼠腹腔巨噬細胞的制備

     

    小鼠采用與免疫小鼠相同的品系,常用BaLb/c小鼠6~10 周齡

    拉頸處死,浸泡于75 %酒精,消毒3~5 分鐘

    用無菌剪刀剪開皮膚,暴露腹膜

    用無菌注射器注入6~8 ml培養液

    反復沖洗,吸出沖洗液

    放入10 ml離心管,1200 轉/分離心5~6 分鐘

    用20 %小牛血清(NCS)或胎牛血清(FCS)的培養液混懸,調整細胞數1×10/ml

    加入96孔板,100 μl/孔

    放入37 ℃,CO2孵箱培養

     

    一般飼養細胞在融合前一天制備,一只小鼠可獲得5~8×10腹腔巨噬細胞,若用小鼠胸腺細胞作為飼養細胞時,細胞濃度為5×10/ml,小鼠脾細胞為1×10/ml,小鼠的成纖維細胞(3T3)1×10/ml,均為100 μl/孔。

     

    3.  骨髓瘤細胞

     

    骨髓瘤細胞系應和免疫動物屬于同一品系,這樣雜交融合率高,也便于接種雜交瘤細胞在同一品系小鼠腹腔內產生大量McAb。

     

    常用骨髓瘤細胞系有:NS1、SP2/0、X63 Ag8.653等。

     

    骨髓瘤細胞的培養適合于一般的培養液,如RPMI1640,DMEM培養基。小牛血清的濃度一般在10~20 %,細胞的最大密度不得超10/ml,一般擴大培養以1∶10稀釋傳代,每3~5 天傳代一次。細胞的倍增時間為16~20 小時,上述三株骨髓瘤細胞系均為懸浮或輕微貼壁生長,只用彎頭滴管輕輕吹打即可懸起細胞。

     

    一般在準備融合前的兩周就應開始復蘇骨髓瘤細胞,為確保該細胞對HAT的敏感性,每3~6月應用8~AG(8氮雜鳥嘌呤)篩選一次,以防止細胞的突變。

     

    保證骨髓瘤細胞處于對數生長期,良好的形態,活細胞計數高于95 %,也是決定細胞融合的關鍵。

     

    4.  免疫脾細胞

     

    免疫脾細胞指的是處于免疫狀態脾臟中B淋巴母細胞和漿母細胞。一般取最后一次加強免疫3天以后的脾臟,制備成細胞懸液,由于此時B淋巴母細胞比例較大,融合的成功率較高。

     

    脾細胞懸液的制備

    在無菌條件下取出脾臟,用不完全的培養液洗一次,置平皿中不銹鋼篩網上,用注射器針芯研磨成細胞懸液后計數。一般免疫后脾臟體積約是正常鼠脾臟體積的2倍,細胞數為2×108左右。

     

    二、細胞融合,選擇雜交瘤

     

    1.  細胞融合流程

     

    (1)取對數生長的骨髓瘤細胞SP2/0,1000 rpm離心5 分鐘,棄上清,用不完全培養液混懸細胞后計數,取所需的細胞數,用不完全培養液洗滌2 次。

     

    (2)同時制備免疫脾細胞懸液,用不完全培養液洗滌2 次。

     

    (3)將骨髓瘤細胞與脾細胞按1∶10或1∶5的比例混合在一起,在50 ml塑料離心管內不完全培養液洗1 次,1200 rpm,8分鐘。

     

    (4)棄上清,用滴管吸凈殘留液體,以免影響PEG的濃度。

     

    (5)輕輕彈擊離心管底,使細胞沉淀略加松動。

     

    (6)在室溫下融合

     

    ①30 秒內加入預熱的1 ml45 %PEG(Merek,分子量4000)含5 %DMSO,邊加邊攪拌。
     

    ②作用90 秒鐘,若冬天室溫較低時可延長至120 秒鐘。
     

    ③加預熱的不完全培養液,終止PEG作用,每隔2 分鐘分別加入1 ml,2 ml,3 ml,4 ml,5 ml和10 ml。

     

    (7)離心,800 rpm,6 分鐘。

     

    (8)棄上清,先用6 ml左右20 %小牛血清RPMI1640輕輕混懸,切記不能用力吹打,以免使融合在一起的細胞散開。

     

    (9)根據所用96孔培養板的數量,補加完全培養液,10 ml一塊96孔板。

     

    (10)將融合后細胞懸液加入含有飼養細胞的96孔板,100 μl/孔,37 ℃、5 %CO2孵箱培養。

     

    一般一塊96孔板含有1×107脾細胞。

     

    2.  HAT選擇雜交瘤

     

    一般在融合24 小時后,加HAT選擇培養液。HT和HAT均有商品化試劑50×貯存,用時1 ml加入50 ml20 %小牛血清完全培養液中。

     

    因為在培養板內已加入飼養細胞、融合后的細胞,200 μl/孔。所以在加選擇培養液時應加3倍量的HAT。我們認為,融合后最初補加的量可用全量的2/3進行選擇,可得到滿意的篩選結果。

     

    50×HAT

    H: 5×10-3M

    A: 2×10-5M

    T: 8×10-4M

     

    一般選擇HAT選擇培養液維持培養兩周后,改用HT培養液,再維持培養兩周,改用一般培養液。

     

    三、抗體的檢測

     

    篩選雜交瘤細胞通過選擇性培養而獲得雜交細胞系中,僅少數能分泌針對免疫原的特異性抗體。一般在雜交瘤細胞布滿孔底1/10面積時,即可開始檢測特異性抗體,篩選出所需要的雜交瘤細胞系。

     

    檢測抗體的方法應根據抗原的性質、抗體的類型不同,選擇不同的篩選方法,一般以快速、簡便、特異、敏感的方法為原則。

     

    常用的方法有

     

    1.  ELISA用于可溶性抗原(蛋白質)、細胞和病毒等McAb的檢測。

     

    2.  RIA用于可溶性抗原、細胞McAb的檢測。

     

    3.  FACS(熒光激活細胞分類儀)用于檢查細胞表面抗原的McAb檢測。

     

    4.  IFA用于細胞和病毒McAb的檢測。

     

    上述方法均為一般實驗室的常規方法,故在此不介紹具體的實驗過程。

     

    可靠的篩選方法必須在融合前建立,避免由于方法不當貽誤整個篩選時機。

     

    四、雜交瘤的克隆化和凍存
     

    克隆化一般是指將抗體陽性孔進行克隆化。經過HAT篩選后的雜交瘤克隆不能保證一個孔內只有一個克隆。在實際工作中,可能會有數個甚至更多的克隆,可能包括抗體分泌細胞、抗體非分泌細胞;所需要的抗體(特異性抗體)分泌細胞和其它無關抗體分泌細胞。要想將這些細胞彼此分開,就需要克隆化。克隆化的原則是,對于檢測抗體陽性的雜交克隆應盡早進行克隆化,否則抗體分泌的細胞會被抗體非分泌的細胞所抑制,因為抗體非分泌細胞的生長速度比抗體分泌的細胞生長速度快,二者競爭的結果會使抗體分泌的細胞丟失。即使克隆化過的雜交瘤細胞也需要定期的再克隆,以防止雜交瘤細胞的突變或染色體丟失,從而喪失產生抗體的能力。

     

    1.  克隆化方案
     

    用克隆化的方法很多,而最常用就是有限稀釋和軟瓊脂平板法。

     

    (1)有限稀釋法的程序
     

    ①制備飼養細胞懸液(同融合前準備)
     

    ②陽性孔細胞的計數,并調細胞數在1~5×103 /ml
     

    ③取130 個細胞放入6.5 ml含飼養細胞完全培養液,即20 個細胞/ml,100 μl/孔加A、B、C三排為每孔2 個細胞。余下2.9 ml細胞懸液補加2.9 ml含飼養細胞的完全培養液,細胞數為10 個/ml,100 μl/孔加D、E、F三排,為每孔1 個細胞。余下2.2 ml細胞懸液補加2.2 ml含飼養細胞的完全培養液,細胞數5 個/ml,100 μl/孔,加G、H兩排,為每孔0.5 個細胞。
     

    ④培養4~5天后,在倒置顯微鏡上可見到小的細胞克隆,補加完全培養液200 μl/孔。
     

    ⑤第8~9天時,肉眼可見細胞克隆,及時進行抗體檢測。
     

    注:初次克隆化的雜交瘤細胞需要在完全培養液中加HT。

     

    (2)軟瓊脂法
     

    ①軟瓊脂的配制
     

    含20 %FCS(小牛血清)的2倍濃縮的RPMI1640

    1 %瓊脂水溶液:高壓滅菌,42 ℃預熱。

    0.5 %瓊脂:由1份1 %瓊脂加1份含20 %小牛血清的2倍濃縮的RPMI1640配制而成。置42 ℃保溫。


    ②用上述0.5 %瓊脂液(含有飼養細胞)15 ml傾注于直徑為9 cm的平皿中,在室溫中待凝固后作為基底層備用。


    ③按100 /ml,500 /ml或5000 /ml等濃度配制需克隆的細胞懸液。


    ④1 ml 0.5 %瓊脂液(42 ℃預熱)在室溫中分別與1 ml不同濃度的細胞懸液相混合。


    ⑤混勻后立即傾注于瓊脂基底層上,在室溫中10 分鐘,使其凝固,孵育于37 ℃,5 %CO2孵箱中。


    ⑥4~5天后即可見針尖大小白色克隆,7~10天后,直接移種至含飼養細胞的24孔板中進行培養。


    ⑦檢測抗體,擴大培養,必要時再克隆化。

     

    2.  雜交瘤細胞的凍存

     

    及時凍存原始孔的雜交瘤細胞、每次克隆化得到的亞克隆細胞是十分重要的。因為在沒有建立一個穩定分泌抗體的細胞系的時候,細胞的培養過程中隨時可能發生細胞的污染、分泌抗體能力的喪失等等。如果沒有原始細胞的凍存,則因為上述的意外而全功盡棄。

     

    雜交瘤細胞的凍存方法同其他細胞系的凍存方法一樣,原則上細胞應在每支安瓿含1×106以上,但對原始孔的雜交瘤細胞可以因培養環境不同而改變,在24孔培養板中培養,當長滿孔底時,一孔就可以凍一支安瓿。

     

    細胞凍存液:

    50%小牛血清

    40%不完全培養液

    10%DMSO(二甲亞砜)

      

    凍存液最好預冷,操作動作輕柔、迅速。凍存時從室溫可立即降到0 ℃,再降溫時一般按每分鐘降溫2~3 ℃,待降至-70 ℃可放入液氮中。或細胞管降至0 ℃ 后放-70 ℃超低溫冰箱,次日轉入液氮中。也可以用細胞凍存裝置進行凍存。凍存細胞要定期復蘇,檢查細胞的活性和分泌抗體的穩定性,在液氮中細胞可保存數年或更長時間。

     

    五、單克隆抗體的大量生產

     

    大量生產單克隆抗體的方法主要有兩種

     

    1.  體外使用旋轉培養管大量培養雜交瘤細胞,從上清中獲取單克隆抗體。但此方法產量低,一般培養液含量為10~60 μg/ml,如果大量生產,費用較高。

     

    2.  體內接種雜交瘤細胞,制備腹水或血清。

     

    (1)實體瘤法 

    對數生長期的雜交瘤細胞按1~3×10/ml接種于小鼠背部皮下,每處注射0.2 ml, 共2~4點。待腫瘤達到一定大小后(一般10~20天)則可采血,從血清中獲得單克隆抗體含量可達到1-10 mg/ml。但采血量有限。

     

    (2)腹水的制備 

    常規是先腹腔注射0.5 mlPristane(降植烷)或液體石臘于BaLb/c鼠,1~2周后腹腔注射1×106個雜交瘤細胞,接種細胞7~10天后可產生腹水,密切觀察動物的健康狀況與腹水征象,待腹水盡可能多,而小鼠頻于死亡之前,處死小鼠,用滴管將腹水吸入試管中,一般一只小鼠可獲1~10 ml腹水。也可用注射器抽取腹水,可反復收集數次。腹水中單克隆抗體含量可達5-20 mg/ml, 這是目前最常用的方法,還可將腹水中細胞凍存起來,復蘇后轉種小鼠腹腔則產生腹水快、量多。

     

    六、單克隆抗體的鑒定

     

    對制備的McAb進行系統的鑒定是十分必要的。應對其做如下方面的鑒定

     

    1.  抗體特異性的鑒定

    除用免疫原(抗原)進行抗體的檢測外,還應用與其抗原成分相關的其它抗原進行交叉試驗,方法可用ELISA、IFA法。例如

    (1)制備抗黑色素瘤細胞的McAb,除用黑色素瘤細胞反應外,還應用其它臟器的腫瘤細胞和正常細胞進行交叉反應,以便挑選腫瘤特異性或腫瘤相關抗原的單克隆抗體。

    (2)制備抗重組的細胞因子的單克隆抗體,應首先考慮是否與表達菌株的蛋白有交叉反應,其次是與其它細胞因子間有無交叉。

     

    2.  McAb的Ig類與亞類的鑒定

    一般在用酶標或熒光素標記的第二抗體進行篩選時,已經基本上確定了抗體的Ig類型。如果用的是酶標或熒光素標記的兔抗鼠IgG或IgM,則檢測出來的抗體一般是IgG類或IgM類。至于亞類則需要用標準抗亞類血清系統作雙擴或夾心ELISA來確定McAb的亞類。在作雙擴試驗時,如加入適量的PEG(3 %),將有利于沉淀線的形成。

     

    3. McAb中和活性的鑒定

    用動物的或細胞的保護實驗來確定McAb的生物學活性。例如如果確定抗病毒McAb的中和活性,則可用抗體和病毒同時接種于易感的動物或敏感的細胞,來觀察動物或細胞是否得到抗體的保護。

     

    4. McAb識別抗原表位的鑒定

    用競爭結合試驗、測相加指數的方法,測定McAb所識別抗原位點,來確定McAb的識別的表位是否相同。

     

    5. McAb親和力的鑒定

    用ELISA或RIA競爭結合試驗來確定McAb與相應抗原結合的親和力。

     

     

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    注意事項

    一、影響因素、失敗原因分析

     

    由于制備McAb的實驗周期長,環節多,所以影響因素就比較多,稍不注意就會造成失敗。

     

    其主要失敗原因和影響因素有

     

    1.  污染

    包括細菌、霉菌和支原體的污染。這是雜交瘤工作中最辣手的問題。一旦發現有霉菌污染就應及早將污染板棄之,以免污染整個培養環境。支原體的污染主要來源于牛血清,此外,其它添加劑、實驗室工作人員及環境也可能造成支原體污染。在有條件的實驗室,要對每一批小牛血清和長期傳代培養的細胞系進行支原體的檢查,查出污染源應及時采取措施處理。對于污染的雜交瘤細胞可以采取生物學的過濾方法,將污染的雜交瘤細胞注射于BALB/c小鼠的腹腔,待長出腹水或實體瘤時,犖菌取出分離雜交瘤細胞,一般可除去支原體污染。

     

    2.  融合后雜交瘤不生長

    在保證融合技術沒有問題的前提下主要考慮下列因素

    (1)PEG有毒性或作用時間過長。

    (2)牛血清的質量太差,用前沒有進行嚴格的篩選。

    (3)骨髓瘤細胞污染了支原體。

    (4)HAT有問題,主要是A含量過高或HT含量不足。

     

    3.  雜交瘤細胞不分泌抗體或停止分泌抗體


    (1)融合后有細胞生長,但無抗體產生,可能是HAT中A失效或骨髓瘤細胞發生突變,變成A抵抗細胞所致。


    (2)有可能是免疫原抗原性弱,免疫效果不好。


    (3)對于原分泌抗體的雜交瘤細胞變為陰性,可能是細胞支原體污染,或非抗體分泌細胞克隆競爭性生長,從而抑制了抗體分泌細胞的生長。也可能發生染色體丟失。

    Goding91982曾提出“三要”“三不要”,可能是防止抗體停止分泌的有效措施。

       

    三要

    要大量保持和補充液氮凍存的細胞原管。
    要應用倒置顯微鏡經常檢查細胞的生長狀況。

    要定期進行再克隆。

    三不要

    不要讓細胞“過度生長”。因為非分泌的雜交瘤細胞將成為優勢,壓倒分泌抗體的雜交瘤細胞。

    不要讓培養物不加檢查地任其連續培養幾周或幾個月。

    不要不經克隆化而使雜交瘤在機體內以腫瘤生長形式連續傳好幾代。

     

    4.  雜交瘤細胞難以克隆化
     

    可能與小牛血清質量、雜交瘤細胞的活性狀態有關,或由于細胞有支原體污染,使克隆化難以成功。若是融合后的早期克隆化,應在培養液加HT。

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